fontsize=20) from sklearn.metrics import normalized_mutual_info_score, adjusted_rand_score def purity = np.max(contingency_matrix, axis=1)/np.sum(contingency_matrix, axis=1) print( f"Mean Class Purity } - {purity_vector[i]:.2f}" ) cluster_purity_vector = np.zeros( (n_clusters) ) cluster_purity_vector = np.max(contingency_matrix, axis=0)/np.sum(contingency_matrix, axis=0) print( f"Mean Cluster Purity - {np.mean(cluster_purity_vector):.2f}" ) for i in range(n_clusters): print( f" {i} - {cluster_purity_vector
肿瘤样本中癌细胞所占比例称为肿瘤纯度(tumor purity),是肿瘤样本的内在因素,在差异甲基化、亚克隆反卷积和亚型聚类等多种分析中具有潜在的重要影响。 评估肿瘤纯度:getPurity data(beta.emp) #beta.emp是一个62例肿瘤和正常样本的甲基化beta值的数据框 (1)评估一个肿瘤样本的纯度(无正常样本) purity <- ,K=3, maxiter=5, tol=0.001) #tumor.data肿瘤样本beta值 #purity纯度评估值 #k是聚类数目 #允许的最大迭代次数,默认值是100 #EM迭代收敛性的容忍度 ,purity = purity) 4. = purity) 输出:所有CpG位点(行)和肿瘤样本(列)的纯化后肿瘤的beta值矩阵 小编总结: 很多评估肿瘤纯度的方法都是基于基因表达或者拷贝数变异,而今天分享的InfiniumPurify
R包应用 01 TPES_purity计算样本纯度 例:TCGA_A8_A0A7 (1)使用数据: TCGA_A8_A0A7_seg: TCGA_A8_A0A7样本的SEG文件,为数据框。 (2)计算纯度: TPES_purity(ID= "TCGA-A8-A0A7", SEGfile = TCGA_A8_A0A7_seg, SNVsReadCountsFile = sample:样本ID purity:TPES评估的样本纯度 purity.min:TPES评估样本的最小纯度 purity.max:TPES评估样本的最大纯度 n.segs:TPES使用的中性片段的拷贝数 使用的假定克隆SNVs的等位基因分数值和TPES_purity计算的密度函数的图形报告。 TPES: tumor purity estimation from SNVs.
copy-number data (estimations were available for only 11 cancer types)7; LUMP (leukocytes unmethylation for purity 结果文件都是在:Tumor purity estimates for TCGA samples. Tumor purity estimates according to four methods and the consensus method for all TCGA samples with available 不同肿瘤纯度方法的归一化 全称是:consensus measurement of purity estimations (CPE) 这里的归一化很简单, CPE is the median purity 然后作者通过分析发现 median purity levels and median mutational burden 具有非常好的相关性,如下: ?
LUMP方法 LUMP (leukocytes unmethylation for purity)方法是在Systematic pan-cancer analysis of tumour purity这篇工作中介绍的 下图为文章中展示每两种评估方法之间的相关性 PAMES方法 PAMES (Purity Assessment from clonal MEthylation Sites),使用几十个高度克隆的肿瘤类型特异性 计算纯度 purity <- compute_purity(tumor_toy_data, list(hyper=info_sites.hg38$hyper Systematic pan-cancer analysis of tumour purity. Tumor purity quantification by clonal DNA methylation signatures.
of the batches we can continue to work on the original gene matrix for DEA ### ###############Tumor purity filtering########### ###vector containing all TCGA barcodes that hhave 60% tumor purity or more Purity.BRCA <-TCGAtumor_purity(colnames(dataPrep1), 0, 0, 0, 0, 0.6)$pure_barcodes ################DEA with Molecular BRCA: #diff contains TCGA samples that have an available molecular subtype ###Also Applying Tumor purity criteria diff<-setdiff(Purity.BRCA, TCGA_MolecularSubtype(colnames(dataPrep[,dataSmTP_short]))$filtered
Pure公司的Cinder驱动程序拥有REST API并支持iSCSI,且“支持OpenStack Juno与Ice House版本外加Purity 0.E. 3.4.2及更新版本。” 这套工具包能够利用Python 2.6及更新版本实现Purity REST API的正常执行。” Pure Storage OpenStack Cinder驱动程序与Python自动化工具包目前已经正式发布,且完全兼容Purity 3.4及其全部次级版本。 Purity OE REST API的相关说明文档已经被包含于Pure的闪存阵列产品当中。
TCGAquery_subtype Retrieve molecular subtypes for a given tumor TCGAtumor_purity Filters TCGA barcodes according to purity parameters TCGAvisualize_BarPlot Barplot of subtypes and clinical info in groups methylation or expression TCGA_MolecularSubtype Retrieve molecular subtypes for given TCGA barcodes Tumor.purity TCGA samples with their Tumor Purity measures UseRaw_afterFilter Use raw count from the DataPrep object
fn=%2FPCAWG%2Fconsensus_cnv%2Fconsensus.20170217.purity.ploidy.txt.gz download? somatic.cna.icgc.public.tar.gz Fconsensus.20170119.somatic.cna.tcga.public.tar.gz Fconsensus.20170217.purity.ploidy.txt.gz somatic.cna.icgc.public.tar.gz Fconsensus.20170119.somatic.cna.tcga.public.tar.gz Fconsensus.20170217.purity.ploidy.txt.gz somatic.cna.tcga.public.tar.gz Fpcawg_donor_clinical_August2016_v9.xlsx Fconsensus.20170217.purity.ploidy.txt.gz
Purity方法 purity方法是极为简单的一种聚类评价方法,只需计算正确聚类的文档数占总文档数的比例: ? 其中Ω={ω1,ω2,...,ωk} 是聚类的集合ωk表示第k个聚类的集合。 purity方法的优势是方便计算,值在0~1之间,完全错误的聚类方法值为0,完全正确的方法值为1。 同时,purity方法的缺点也很明显它无法对退化的聚类方法给出正确的评价,设想如果聚类算法把每篇文档单独聚成一类,那么算法认为所有文档都被正确分类,那么purity值为1!而这显然不是想要的结果。
12), labels = c( 'Primary tumor', 'Metastatic tumor', 'Adjacent normal'))) ### Purity H.purity <- ComplexHeatmap::Heatmap( rev(sample.info$purity_HTseq_FPKM), column_names_gp = grid: :gpar(fontsize = 12), cluster_rows = FALSE, name = 'Tumor purity score', col = viridis::plasma( + H.plate + H.tss + H.tissue + H.pam50.tcga + H.pam50.genefu + H.ls + H.purity
filtering########### ###vector containing all TCGA barcodes that hhave 60% tumor purity or more # TCGAtumor_purity (colnames(dataPrep1), 0, 0, 0, 0, 0.6) # filtered 为被过滤的数据, pure_barcodes是我们要的数据 Purity.BRCA<-purityDATA BRCA: ##diff contains TCGA samples that have an available molecular subtype ###Also Applying Tumor purity 方法纯化后的数据与肿瘤组织中的数据(已去除异常值)的分子亚型数据进行setdiff运算 # 也就是将在Purity.BRCA肿瘤组织中都具有分子亚型的barcode返回,总共83个。 diff<-setdiff(Purity.BRCA,TCGA_MolecularSubtype(colnames(dataPrep[,dataSmTP_short]))$filtered) write.csv
虽然PhyloWGS本来是为WGS测序数据设计的,但是软件作者说明了其在WES数据也可以使用,可以看到PhyloWGS算法得到的克隆数量这个指标是跟一些因素相关的,包括purity (B) inferred Column 10—Top scoring phylogenies mean number of subclonal mutations Column 11—TCGA curated tumor sample purity Column 12—ABSOLUTE inferred tumor sample purity.
PRAGMA RESTRICT_REFERENCES(min_sal, WNPS); END; --下面的代码创建使用纯度级别的包体 CREATE OR REPLACE PACKAGE BODY purity END; --创建包体后,收到了如下的错误信息,因为两个公共函数指定了纯度级别为WNPS,而且函数内的代码对变量进行了赋值 scott@ORCL> show errors package body purity ; Errors for PACKAGE BODY PURITY: LINE/COL ERROR -------- --------------------------------------- Subprogram 'MIN_SAL' violates its associated pragma --下面使用初始化包的方法来为变量赋值 CREATE OR REPLACE PACKAGE BODY purity ; scott@ORCL> exec :maxsal:=purity.maxsal; scott@ORCL> print minsal maxsal; MINSAL ---------- 800
PreprocessingOutput.png width 生成图片的宽度 height 生成图片的高度 datatype 描述RangedSummarizedExperiment 数据类型的字符串 第五步:TCGAtumor_purity ()筛选肿瘤纯度大于60%的肿瘤barcodes # TCGAtumor_purity(barcodes, estimate, absolute, lump, ihc, cpe),使用来自5种方法的5个估计值作为阈值对 0.6(cpe是派生的共识度量,是将所有方法的标准含量归一化后的均值纯度水平,以使它们具有相等的均值和标准差) #筛选肿瘤纯度大于等于60%的样本数据 purityDATA <- TCGAtumor_purity (colnames(dataPrep1), 0, 0, 0, 0, 0.6) # filtered 为被过滤的数据, pure_barcodes是我们要的肿瘤数据 Purity.LIHC<-purityDATA 第六步:将肿瘤表达矩阵与正常组织表达矩阵合并,进行基因注释 #获取肿瘤纯度大于60%的340个肿瘤组织样本+50个正常组织样本,共计390个样本 puried_data <-dataPrep2[,c(Purity.LIHC
的优先级,当连线重叠时,优先级越高的越先显示; 在links中,外观上最需要调整的是曲线的弯曲程度,有3个参数控制曲线的弯曲程度: bezier_radius crest bezier_radius_purity bezier_radius_purity控制有效的bezier_radius,示意图如下 ? 除了上述的曲线外,links还提供了ribbon的展示形式,用法如下 ? 生成的效果图: ?
class distribution are preferred Entropy: measure of node impurity Low entropy = low uncertainty & high purity High entropy = high uncertainty & low purity Measures homogeneity of a node Maximum -> records are equally an impurity measure The set {A,B,C,A,A,A,A,A} has low entropy: low uncertainty and high purity The set {A,B,C,D,B,E,A,F} has high entropy: high uncertainty and low purity -appreciate
在相关性模块下,选择肿瘤类型,输入基因名称,待分析的基因,并选择相关性矫正选项(None或者Tumor purity)。 ? 在None,无矫正的条件下,得出cor数值和p值。 ? 在tumor purity矫正的条件下,得出cor数值和p值。 ? 利用word表格形式,编辑相关性分析的结果(数据太多,PPT放不开)。
Params map(LongMatrix value) { // 使用 extractParamsFromConfusionMatrix 根据混淆矩阵计算 purity matrix)); } } 5.2 extractParamsFromConfusionMatrix extractParamsFromConfusionMatrix 这里就是根据混淆矩阵计算 purity predictLabel[i] / actualLabel[j])); tp += combination(matrix[i][j]); } purity += max; } purity /= total; mutualInfor /= Math.log(2); long fp = tpFpSum - tp; long , purity) .set(ClusterMetrics.RI, ri) .set(ClusterMetrics.ARI, (tp - expectedIndex) /
"Inferring tumour purity and stromal and immune cell admixture from expression data." STromal and Immune cells in MAlignant Tumor tissues using Expression data) is a tool for predicting tumor purity represents the infiltration of immune cells in tumor tissue), and 3) estimate score (that infers tumor purity