IFN-γ(干扰素γ)是M1型巨噬细胞极化的关键细胞因子。 重组IFN-γ还可以激活大鼠的中性粒细胞,并且激活后的粒细胞可诱导肿瘤细胞的凋亡[5]。重组IFN-γ(干扰素γ)还具有肿瘤抑制活性。 等基因的表达[6]。 其特点是产生及分泌高水平的促炎细胞因子(如TNF-α、IL-6和IL-12)以及表达高水平的MHC-II、CD80、CD86和iNOS。 rIFN‐γ‐activated rat neutrophils induce tumor cell apoptosis by nitric oxide. 1997, 71 (2), 231-236.[6]
二、IFN-γ对淋巴细胞亚群的调控(一)细胞毒性T细胞细胞毒性T细胞(CTL)既是IFN-γ的主要来源,也是其作用的重要靶细胞。 三、IFN-γ对固有免疫细胞的调控(一)NK细胞IFN-γ可激活NK细胞的抗肿瘤功能。其肿瘤浸润依赖于IFN-γ诱导的CXCR3表达,IFNGR1或CXCR3基因敲除小鼠均表现为肿瘤浸润NK细胞减少。 在B细胞中,IFN-γ与B细胞受体及CD40信号协同,诱导生发中心转录因子BCL-6表达,并与IL-12协同促进抗体类别转换至IgG2a,增强抗体依赖性细胞毒性。 四、IFN-γ对肿瘤细胞的直接调控肿瘤细胞是TME中对IFN-γ的关键响应者。 小鼠IFN-γ试剂盒(HICA)在上述机制研究中用于定量检测IFN-γ水平,为解析其剂量依赖性效应提供了关键数据支撑。
即将IFN-γ和雷帕霉素诱导的FLSreg细胞膜包裹在纳米颗粒上,称为FIRN。在RA小鼠模型中,FIRN显示出良好稳定性、炎性关节靶向能力以及治疗效果。 该研究证明不同的细胞因子可以诱导不同的FLS表型,干扰素-γ(IFN-γ)能诱导FLS的调节表型(FLSreg)特征,诱导几种抑制分子(PD-L1,Galectin-9等)的高表达,同时应用雷帕霉素能增强 IFN-γ对FLS的作用。 但该研显示,IFN-γ同时能诱导FLS产生促炎因子IL-6。因此,为了避免IFN-γ的促炎作用,保留FLSreg的特性,该研究设计了一种新的RA仿生治疗策略。 即将IFN-γ和雷帕霉素诱导的FLSreg衍生细胞膜包裹在纳米颗粒上,称为FIRN。该方法保留了细胞膜表面的免疫抑制分子,同时避免了IFN-γ诱导FLS产生的IL-6引入体内产生促炎效应。
信号1、先天性炎症细胞因子IL-1β、TNF-α和IL-6 三种关键的先天性炎症细胞因子(IL-1β、TNF-α、IL-6)在癌症中的复杂作用 核心共性与促瘤机制: 来源:主要由髓系细胞产生,是慢性炎症的关键驱动因子 IL-6: 作用:通过gp130/STAT3通路广泛促瘤,并影响全身代谢。 困境:直接阻断IL-6/IL-6R在癌症治疗中收效甚微,暗示其主要作用可能也在肿瘤早期。 时机是关键:IL-1β和IL-6的案例表明,这些炎症因子在肿瘤起始和早期阶段可能扮演了更关键的角色,而在晚期已确立的肿瘤中,其作用可能被其他机制替代或变得复杂,导致单纯阻断效果不佳。 核心作用是强力诱导IFN-γ的产生:既能刺激NK细胞产生IFN-γ,也能促使CD4+ T细胞分化为Th1表型。 其抗肿瘤效果在很大程度上依赖于IFN-γ。 主要促瘤:在已形成的癌症中,直接为肿瘤细胞提供生长和生存信号,类似于IL-6。
背景介绍γ干扰素(IFN-γ),即Ⅱ型干扰素,是一种典型的促炎细胞因子,具有广泛的免疫调节活性。在炎症期间主要由T细胞和自然杀伤细胞产生,IFN-γ对宿主防御至关重要。 用抗小鼠IFN-γ抗体包被于酶标板上,实验时样品(或标准品&质控品)中的小鼠IFN-γ会与包被抗体结合。 后依次加入生物素化的抗小鼠IFN-γ抗体和辣根过氧化物酶标记的亲和素,抗小鼠IFN-γ抗体与结合在包被抗体上的小鼠IFN-γ结合,生物素与亲和素特异性结合而形成免疫复合物,游离的成分被洗去。 用酶标仪在450 nm波长处测OD值,IFN-γ浓度与OD450值之间呈正比,通过绘制标准曲线计算出样品中IFN-γ的浓度。 免疫调节研究:探究 IFN-γ 在免疫细胞活化、分化及免疫应答中的调控作用。炎症与疾病机制研究:分析 IFN-γ 在动脉粥样硬化等炎症相关疾病中的作用机制。
)、IL-28B(IFN-λ3)、IL-29(IFN-λ1)▐ 特征:同属一基因簇;蛋白质一级和二级结构相似, 所有成员都由六个 α 螺旋 (A–F) 及连接环构成,其中四个螺旋紧密排列形成经典的左旋四螺旋束 、IL-28B/IFN-λ3 和 IL-29/IFN-λ1)[1][2][3]。 因子炎症相关IL-10抗炎IL-19抗炎IL-20主抗炎,某些疾病如肿瘤中促炎IL-22抗炎/促炎双重作用IL-24抗炎/促炎双重作用IL-26促炎IL-28A (IFN-λ2)促炎IL-28B (IFN-λ3 )IL-36βCT-1IL-28B (IFN-λ3)IL-36γCLCIL-29 (IFN-λ1)IL-36RaIL-3804小结好啦~上期小 M 为大家介绍了 IL-1、IL-2、IL-6 家族,本期与大家探讨的是同样值得关注的 Frontiers in immunology. 2023 Jun 8;14:1161067.[6]Iyer SS, Cheng G.
此外,IFN-γ信号通路相关基因如CIITA、MX1、IDO1亦呈现显著差异表达。既往研究曾报道IFN-γ与IL-12p70之间存在正反馈调节环路,但本研究数据提示可能存在更为上游的调控因子。 模型分析显示,IFN-β的早期产生与IL-12p70的后续分泌呈现高度相关性,提示IFN-β是决定TLR4通路下游IL-12p70应答强度的上游调控因子。 五、临床疾病模型中的通路验证(一)COVID-19患者中的IFN-β-IL-12p70轴变化为检验上述机制在临床感染性疾病中的适用性,研究纳入轻症、重症及康复期COVID-19患者,检测血清中IFN-β 结果显示,各患者组中IL-12p70分泌均与IFN-β水平呈显著正相关。住院期间,TLR4通路活化后IFN-β-IL-12p70轴的激活程度下降;患者康复后,该通路的激活水平恢复至正常范围。 这一发现为理解感染后免疫重建提供了新的观察维度,也进一步确证了IFN-β在IL-12p70调控中的核心地位。
例如,IL-2促进T细胞增殖,IL-6参与炎症反应,IL-10则具有抗炎作用。干扰素(IFNs)干扰素因具有"干扰"病毒复制的能力而得名,分为I型(IFN-α、IFN-β)和II型(IFN-γ)。 其中,IFN-α已被广泛应用于乙肝、丙肝和某些癌症的治疗。肿瘤坏死因子(TNF)TNF-α是重要的促炎细胞因子,不仅参与抗肿瘤免疫,还在类风湿关节炎、炎症性肠病等自身免疫性疾病中发挥关键作用。 细胞因子与疾病治疗的关联自身免疫性疾病在类风湿关节炎、银屑病等自身免疫性疾病中,TNF-α、IL-6、IL-17等促炎细胞因子过度表达。 一方面,IFN-α、IL-2已被用于某些癌症的治疗;另一方面,抑制肿瘤微环境中的免疫抑制性细胞因子,如TGF-β,可增强抗肿瘤免疫应答。
表达DACA的ECN(SYN-PTET-DACA)与RAW 264.7巨噬细胞系共培养后,IFN-β1的分泌呈剂量依赖性,而未诱导的SYN-PTECT-DACA则无法诱导IFN-β1的产生。 与体外获得的结果相似,在体内与非工程ECN相比,工程ECN产生CDA导致IFN-β1诱导增加。此外,SYN-PTET-DACA治疗在治疗开始后8天显著降低了肿瘤生长。 虽然用工程和非工程ECN治疗均导致先天免疫相关的细胞因子(如肿瘤坏死因子α、GM-CSF、IL-6、IL-1β和CCl-2)在治疗24小时后增加,但仅SYN-PTET-DACA治疗在治疗8天后引起T细胞相关细胞因子 (如IL-2、颗粒酶B和IFN-γ)的表达。
然而,HBV主要感染的肝实质细胞本身对IFN-α的应答能力有限,而肝内的非实质细胞(如巨噬细胞)却能产生并传递强烈的IFN-α诱导的抗病毒效应。 前期研究发现,巨噬细胞等非实质细胞可通过释放外泌体,将IFN-α诱导的抗病毒活性传递至HBV复制的肝细胞中,从而有效抑制病毒复制。 阐明这一过程,对于理解IFN-α抗HBV的完整作用网络及开发新型抗病毒策略至关重要。 1.上游信号验证:在探究巨噬细胞如何响应IFN-α产生"可传递的抗病毒状态"时,该重组蛋白可作为工具,验证IFN-α与巨噬细胞表面IFNAR1的结合及下游STAT等通路的激活,这是启动抗病毒基因表达、进而可能调控外泌体内容物装载的前提 3.比较研究工具:该蛋白有助于在平行研究中,对比"经典"的IFN-α直接信号传导与本研究揭示的"外泌体介导"的信号传递在效率、动力学和效应谱上的差异。
本研究发现由ILC1s产生的IFN-γ通过影响其原代细胞的增殖进而促进自身发育的过程。首先,与骨髓中存在NK祖细胞相比,肝脏中存在ILC1祖细胞与肝脏IFN-γ ONILC1原位优先作用是一致的。 第二,IFN-γ积极促进silc-1(casps3)的分化,因为LSM细胞表达IFN-γ受体,这种信号通路在这些细胞中是活跃的。 最后,IFN-γ信号以T-bet依赖的方式促进LSM细胞的增殖和分化,而不是ilc-1细胞的增殖和分化。 然而,ILC1分泌的IFN-γ促进ILC1的分化,而cNK细胞分泌的IFN-γ不支持ILC1分化的这一观点仍有待确定。 LSM cells expressed IFN-γ-stimulated genes.
在体外用这些细胞因子刺激原代小鼠的肝细胞,得出了TNF-α和IFN-γ能诱导PCSK9的mRNA表达(图2B)的结论。 图 2 A , 在心脏移植后第6天,从同源(B6到B6小鼠,同源组)和异源小鼠(BALB/c到B6小鼠,异源组)中收集血清。 B,从B6小鼠中分离出原代肝细胞,用PBS、TNF-α或IFN-γ培养24小时,并收集Pcsk9 mRNA,用qPCR测定进行分析(n=3)。 C,细胞因子(TNF-α和IFN-γ)和信号通路(P65和STAT1)通过转录因子SREBP2调节肝细胞中PCSK9表达。 增加的PCSK9抑制了CD36的表达和巨噬细胞对脂肪酸的吸收,有利于促进供体反应性T细胞的增殖和IFN-γ的产生(图8)。
其核心组分包括白细胞介素-2(IL-2)、白细胞介素-4(IL-4)、抗分化簇3(CD3)单克隆抗体、抗分化簇28(CD28)单克隆抗体、抗人白细胞介素-4(IL-4)单克隆抗体、抗人干扰素-γ(IFN-γ 白细胞介素-4是驱动Th2极化的关键细胞因子,其通过激活信号转导及转录激活因子6(STAT6)信号通路,诱导GATA结合蛋白3(GATA3)等Th2特异性转录因子的表达。 抗人干扰素-γ单克隆抗体则通过中和IFN-γ,有效阻断Th1型分化路径,确保T细胞向Th2方向稳定分化。 STAT6磷酸化后形成二聚体转位至细胞核,直接结合于GATA3基因座,启动其转录。 Th0组使用含抗人IL-4单克隆抗体和抗人IFN-γ单克隆抗体的培养基,在不添加极化细胞因子的条件下培养,确保T细胞维持在初始未极化状态。
1 IFN- γ 《IFN- γ 研究进展与临床应用 》中提到: 干扰素是细胞被病毒感染时产生的一类细胞因子,调控感染后固有免疫和获得性免疫反应。 国际干扰素命名委员会按干扰素的抗原特异性将其分为 3型:IFN- α、IFN- β 和 IFN- γ,各型又因氨基酸序列的不同分为若干个亚型, IFN- γ 可能有 4 个亚型。 IFN- α 和 IFN- β 属于Ⅰ型干扰素,为病毒或人工合成的聚核苷酸诱导白细胞产生,IFN- γ 为特异性抗原(细菌、LPS) 、PHA 和卡介苗(BCG)等刺激T 细胞产生。 IFN-γ的来源:相比Ⅰ 型干扰素,能够产生 IFN- γ 的细胞类型较少。 体液免疫中,小剂量 IFN- γ 主要发挥抑制抗体产生的作用。 抗入侵微生物作用。 IFN- γ 的受体在人体内广泛存在,人类细胞几乎均存在 IFN- γ 受体。
最近的研究表明,肿瘤浸润性T淋巴细胞在肿瘤内分泌促炎细胞因子干扰素γ (IFN-γ)可诱导肿瘤细胞铁死亡,从而产生抗肿瘤免疫原性。 IFN-γ可抑制半胱氨酸/谷氨酸抗转运系统Xc-的两个内源性亚单位SLC7A11和SLC3A2的表达,从而阻碍细胞内谷胱甘肽(GSH)的合成并引发肿瘤细胞的脂质过氧化。 尽管如此,由于肿瘤微环境中IFN-γ分泌受损,IFN-γ介导的Xc-系统抑制适度地诱导肿瘤细胞铁死亡。 此外,该纳米粒子可以通过可电离核的质子化进行酸可激活的光动力治疗,并且有效募集肿瘤浸润性T淋巴细胞分泌IFN-γ,并使肿瘤细胞对RSL-3诱导的铁死亡敏感。 本研究证实了一种新型光免疫治疗机制,即通过诱导肿瘤内IFN-γ的分泌来触发肿瘤细胞的铁死亡。此外,本研究为系统性递送GPX4抑制剂和ICD诱导剂提供了一种纳米平台,用于铁死亡相关的肿瘤免疫治疗。
这些包括阻碍T细胞浸润和细胞毒性,募集抑制性肿瘤相关巨噬细胞(TAM)和调节性T细胞(Tregs),以及分泌抑制性细胞因子和代谢物,这是有效抗肿瘤免疫和免疫治疗的主要障碍6。 我们首先通过在连续组织切片中对ILT4、CD3和IFN-γ进行共染色,证实了ILT4水平与T细胞浸润和IFN-γ表达之间的相关性。肿瘤细胞中ILT4表达与CD3 T细胞密度和IFN-γ产生呈负相关。 此外,与抗ILT4或抗PD-L1预处理的肿瘤细胞共培养的T细胞分泌的IFN-γ增加,联合治疗最显着地增加了IFN-γ释放到上清液中。 然而,组间差异远小于在野生型C57BL / 6小鼠中观察到的差异,表明PIR-B介导的免疫抑制参与了肿瘤进展。 与在C56BL / 6小鼠中获得的结果一致,ILT4抑制不会改变脾脏和血液中的T亚群分布。此外,ILT4阻断增强了小鼠血液和脾脏CD4和CD8 T细胞亚群中IFN-γ的表达。
CLE 患者病变和非病变皮肤的 KCs 表现出病理性 I 型 IFN 特征 大多数细胞是角质细胞,进一步对角质细胞聚类发现14个亚群,包括(5,6,8和13)由狼疮患者的KCs组成(但是这里看起来11亚群的 为了研究细胞因子反应是否驱动了CLE中疾病的KC亚聚集,使用小组先前开发的细胞因子反应特征,这些特征包含通过一组细胞因子[IFN-α,IFN-γ,肿瘤坏死因子(TNF),白细胞介素-17A(IL-17A 狼疮富集的基础(亚群8)和棘(亚群5和6)亚群几乎完全由具有高IFN-α模块评分的KCs组成。 进行 the lesional CLE versus healthy basal KCs 之间的差异表达分析 病变细胞中顶部上调基因中的I型IFN下游基因(例如MX1,IFITM1,IFITM3,IFI6, IFN FB最独特的区别在于IFN-α和IFN-γ细胞因子特征,与KCs一样,IFN细胞因子模块评分在非病变FB中最高。
具体表现为IFN-γ(P = 0.034)、TNF-α(P = 0.022)、IL-1β(P = 0.0002)、IL-4(P = 0.036)、IL-6(P < 0.0001)、IL-8(P = 0.0004 值得注意的是,重症患者的I型干扰素反应出现受损,表现为血浆IFN-α浓度未显著升高,且ICU住院期间呈下降趋势。 此外,抗SARS-CoV-2抗体水平及中和活性在重症与非重症组间无显著差异,但发现2例重症患者携带抗IFN-α2和抗IFN-ω中和自身抗体,这与SARS-CoV-2中和抗体滴度缺失相关。
二、Th1细胞的生物学特征Th1细胞是CD4+辅助性T细胞的重要功能亚群,以产生干扰素-γ(IFN-γ)为主要特征,同时分泌IL-2和淋巴毒素等效应分子。 Th1细胞分泌的IFN-γ可活化巨噬细胞,增强其杀灭胞内病原体的能力,破坏病原体的免疫逃避策略。 Th1细胞的功能由其特异性转录因子T-bet驱动,该转录因子不仅诱导IFN-γ表达,还抑制向其他Th亚群分化的信号通路。 Th1分化由IL-12和IFN-γ两种关键细胞因子驱动。活化的抗原提呈细胞分泌IL-12,激活初始T细胞中的STAT4转录因子。 STAT4促进T-bet表达,T-bet作为Th1分化的主调节转录因子,直接诱导IFN-γ基因转录。IFN-γ进一步通过STAT1信号通路增强T-bet表达,形成正反馈环路,巩固Th1分化方向。
细胞内对IFN-γ和TNF-α的染色显示,PDGF-DD刺激正常NK细胞,诱导产生IFN-γ的细胞以及分泌IFN-γ和TNF-α的双功能细胞(图2G)。 它们分泌更多的IL-8(图4E和4F)和IL-6(图4G),这可能会诱导炎症细胞的募集。 ? NK(DD+IgG) sup诱导了大量独特转录本的表达(738),其中许多转录本反映了IFN-γ和TNF-α的影响(图4I)。 在稳定状态下,在脾脏和淋巴结NK细胞中发现了一小部分NKp44(图6A、S6A和S6B)。NKp44还表达在小肠中较大的ILC3子集和少量NK/ILC1细胞上(图S6C和S6D)。 ? 在体外被IL-2和IL-15激活后,NK细胞NKp44明显上调,炎症细胞因子进一步刺激NKp44升高(图6B)。 ? 作者选择B16转移性肿瘤模型(对NK细胞IFN-γ分泌能力敏感)。