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细胞转染小秘籍 | MedChemExpress
不都告诉你们细胞转染的一大法宝了吗！赶紧搬好小板凳跟着我一起复习一下。细胞转染实验是生物学实验中较为基础的实验，主要指将 DNA/RNA 导入真核细胞。 细胞转染方法五花八门，常见的可分为化学法、物理法和病毒法。 但对于一些难转染细胞，建议刚开始转染前使用无血清培养基，至少转染一小时后再换成有血清培养基。小白: 那培养基中含有抗生素会对细胞转染有影响吗？小M: 可添加抗生素。 如有必要，可在 1:1-1:5 的范围内调整以优化转染效果。最佳转染条件因不同的细胞类型和培养条件而有所区别，转染前，可做预实验摸索最佳转染比例。 宿主范围广MCE PolyFast Transfection Reagent 对多种常见细胞具有高水平转染效率，也可转染一些原代细胞和难转染细胞。
49210编辑于 2023-02-15 AbMole细胞实验必备：G-418--构建稳定转染细胞株的关键分子
G-418（遗传霉素，AbMole，M2719）一种在分子生物学和细胞生物研究中常用且重要的工具分子，多用于细胞转染后的筛选、转基因动植物研究等实验。 在真核细胞转染或者原核转化中，实验人员可以选择Neo基因（编码氨基糖苷磷酸转移酶，APH）作为筛选标记，与目的基因串联一起进行转染/转化。 该酶能够共价修饰 G-418，改变 G-418 的化学结构，使其无法与核糖体正常结合，从而削弱了 G-418 对细胞蛋白质合成的抑制作用。成功转染的细胞即可获得对 G-418 的抗性。 G418结构式二、G-418用于稳定转染细胞筛选在细胞生物学研究中，稳定转染细胞系的建立是深入研究基因功能、信号通路等的重要手段。 确定最佳筛选浓度后即可进行筛选，一般在转染后的24小时将细胞消化重新铺板，在上述操作中需要控制细胞的密度，不要超过50%，待细胞再次铺板完成后即可加入筛选培养基，注意每隔3~5天更换一次筛选培养基。
21910编辑于 2025-12-01NK+HEK293细胞双杀！AD600150玩转Trim28-Eomes互作实验
ZETA life转染试剂（AD600150）在实验中的应用转染试剂型号：Advanced DNA RNA Transfection Reagent（货号：AD600150）转染细胞及基因：• 原代小鼠 NK细胞：转染Eomes过表达质粒（用于验证Eomes对DX5表达的挽救效应）。 转染实验数据及贡献分析实验数据定位1. 原代NK细胞转染Eomes（Fig.5E）： ◦ 实验内容：通过转染Eomes过表达质粒，恢复gp96缺陷型NK细胞中DX5的表达。 HEK293细胞转染gp96与Eomes（Fig.6G）： ◦ 实验内容：过表达gp96增强Eomes的蛋白稳定性。 5.转染试剂的核心贡献• 高效递送能力：成功转染难转染的原代NK细胞（转染效率>60%），为功能挽救实验提供技术保障。
22110编辑于 2025-05-27- 来自专栏芒果先生聊生信
HEK293细胞系，最全总结
293T细胞还表达E1A蛋白，SV40 large T抗原，含有SV40复制起始点与启动子区的质粒可以复制。293T细胞容易转染，用磷酸钙、PEI或脂质体转染，效率均可达90%以上。 293T/17细胞是293T细胞中共转染pBND和pZAP质粒而获得的具有G418耐受的细胞系。该细胞系仍保留高转染效率的特点。 293-6E细胞是在293-H细胞中插入截短过后的EBNA-1基因的细胞系，其能够在无血清培养基中高表达生产蛋白及病毒载体。293-6E细胞为悬浮状态，主要用于蛋白表达。 ? 293FT细胞是在293F细胞系中插入pCMV-SPORT6-TAg.Neo质粒的转化细胞系，能够快速增殖，易转染，其能够用于慢病毒载体的生产。293FT细胞能制造高滴度慢病毒。 293SG是293S细胞用甲基磺酸乙酯诱变处理，蓖麻毒素选择后再转染pcDNA6/TR质粒得到耐受蓖麻毒素的细胞系。
7.4K20发布于 2020-08-28 哺乳动物重组蛋白表达｜HEK293CHO细胞蛋白表达服务｜哺乳表达
为方便后续的纯化操作，通常会再添加6xHis、FLAG等亲和标签。如果需要分泌表达，还要加入合适的信号肽序列，如Igκ轻链信号肽就是常用的选择。2. 细胞转染细胞转染即将构建好的载体导入细胞。常用的转染方法有：①脂质体转染操作简便，适合小规模实验；②PEI转染性价比高，适合中等规模；③电转染适合难转染的细胞。4. 蛋白表达一般情况下，细胞转染后48-72小时即可收获蛋白。对于难表达的蛋白，可以尝试低温培养，例如30-33℃。5. 蛋白收获分泌表达的蛋白可直接收集培养上清，通过离心去除细胞碎片即可。 如果是胞内表达的蛋白，则需要裂解细胞释放目的蛋白，必要时可借助超声破碎。6. 蛋白纯化纯化方法可根据前期设计的标签进行选择，His标签蛋白常用镍柱亲和纯化，抗体则多用Protein A/G纯化。 Q2：HEK293和CHO细胞系应该如何选择？A：选择主要取决于实验目的。HEK293细胞转染效率高，适合快速小规模表达；CHO细胞则更适合需要长期稳定表达和大规模生产。
46010编辑于 2025-07-16- 来自专栏生命科学
MCE | 抗生素抗性筛选
转染与抗生素筛选 转染 (Transfection) 是真核细胞主动或被动导入外源核酸片段而获得新表型的过程，引入的遗传物质 (DNA 和 RNA) 稳定或暂时存在于细胞中，据此，转染可分为稳定转染和瞬时转染 稳定转染：引入的遗传物质常带选择性标记基因，它们被整合到宿主的基因组中，即使在宿主细胞分裂传代后也能维持转基因的表达。即稳转的细胞系通过一些选择性标记反复筛选，得到稳定转染的同源细胞系。 关于抗生素抗性筛选：携带抗生素抗性标记的载体进入细胞，转染成功的细胞在含有抗生素的选择培养基中生长，而不带有抗性基因的细胞会被抗生素杀死，最后获得稳定的带抗性细胞株。 首先将 HEK293TCas9细胞进行慢病毒转染，然后再用嘌呤霉素孵育进行筛选。因低浓度的嘌呤霉素对活细胞具有毒性，所以筛选后存活下来的细胞即具有嘌呤霉素抗性。 epigenetic silencing of ETS1中，也是选取了 4 个细胞系，在用慢病毒转染后，用嘌呤霉素感染细胞 1 周或更长时间，通过 RT-qPCR 和 WB 分析确定转染的效率。
67820编辑于 2023-03-10 - 来自专栏生命科学
细胞转染、重组蛋白、荧光素酶检测试剂盒实验 | MedChemExpress
(PolyFast Transfection Reagent) 细胞转染主要将 DNA/RNA 导入真核细胞；转染方法五花八门，常见的转染方法可分为化学法、物理法和生物法。 先了解一下常见的几项转染技术 不同转染技术都有各自明显的优缺点，是不是不知道该怎么选择啦？告诉你一个绝招吧！ 其原理是当带正电荷的聚合物和带负电荷的 DNA/RNA 结合成复合物后，通过胞吞作用进入细胞，并在胞质中将核酸释放出来，完成转染。 操作简单，适用性广，在体内和体外都有很高的转染效率，且对细胞几乎没有毒性，这可是转染实验中的一大法宝。 对多种常见细胞具有高水平转染效率，对原代细胞和难转染细胞也具有较好的效果 Anti-Flag Affinity Gel 是一种纯化的小鼠 IgG2b 单克隆抗体，共价连接琼脂糖 Sepharose 4B
47710编辑于 2023-03-03 纳米快递员已上线! LNP 精准投递_MedChemExpress(MCE 中国)
细胞转染不顺利？基因递送总是失败？别担心！ MCE LNP 试剂盒：纳米级解决方案，细胞顺利签收• 精准投递，细胞无可拒签：LNP 特有的跨膜转运及逃逸机制，实现 RNA 的高效递送；• “零”暴力拆箱：温和转染，微量样品的包封率 > 80%，递送效率高 ；• 超广谱兼容：多种配方适配悬浮细胞、贴壁细胞、免疫细胞、干细胞等多种细胞类型，确保各类细胞“乖乖签收”。 传统转染 VS MCE LNP 试剂盒投递无忧：用数据说话精准投递不是说说而已——来看实测数据，带你直观感受我们 LNP 试剂盒是如何让细胞“签收率”一路飙升的！ siRNA 转染-基因沉默效率更优异 (30 nM CY3 标记的 siRNA，转染后 6 h 进行荧光拍摄)HY-K2022 In vivo OptiLNP RNA Transfection Reagent
60910编辑于 2025-06-25- 来自专栏芒果先生聊生信
慢病毒：肿瘤研究的利器
（来自吉满生物公众号） 常用的293T细胞转染效率就很高，但是大多数细胞转染效率通常比较低。据芒果本人经验，慢病毒在构建过表达、干扰和敲除方面都是效率极高的，甚至可以用于假病毒包装。 CAS9稳转细胞的构建 实验流程 制备慢病毒穿梭质粒及辅助包装质粒，用无内毒素的试剂盒抽提，共转染 293T 细胞，转染后 18小时后更换为完全培养基，培养 48 小时后，收集富含慢病毒颗粒的细胞上清液 293T细胞：细胞铺板，6孔板按照（6~8）x10^5/孔铺板，一般早上铺板，第二天下午就可以做转染了。 转染体系：pLenti-CAS9-puro，pSPAX2, pMD2G按照4：3：1的比例（2μg，1.5μg和0.5μg）混匀，再与转染试剂混匀加入前天准备好的293T细胞中，钙转或PEI转染，293T 感染靶细胞 细胞准备：将状态良好的目的细胞（上述论文中为RD横纹肌肉瘤细胞，是Entrovirus B的嗜性细胞）接种到6孔板，使浓度为 (4~6)×10^5/ml 细胞。
2K10发布于 2020-08-04 稳定细胞系构建原理与流程解析
一、稳定细胞系的基本原理稳定细胞系的核心是基因的基因组整合：基因组整合目标基因通过各种方法插入宿主细胞的染色体中，而不是停留在细胞质内（如瞬时转染）。 避免了瞬时转染中蛋白表达随时间衰减的问题。二、稳定细胞系构建的流程稳定细胞系的开发一般包括以下几个核心环节：1. 设计与载体构建目标基因优化：提高翻译效率，添加信号肽和标签。 宿主细胞匹配：根据蛋白特性选择 CHO、HEK293 或其他专用细胞系。2. 基因递送与整合转染/转导方法：化学转染：适用于多数易转染细胞电穿孔：适合难转染或悬浮细胞病毒载体（慢病毒、腺病毒等）：高效率，适合非分裂细胞整合方式：随机整合：快速，但表达水平受染色体位置影响位点特异性整合 克隆表征与稳定性验证表达量测定：ELISA、Western blot 或荧光定量长期传代测试：在无选择压力下持续多代传代，观察表达水平变化功能验证：确保蛋白结构正确、功能活性保持6.
13610编辑于 2026-01-14ZETA life介导THP-1细胞BAMBI基因调控巨噬细胞极化研究
ZETA life转染试剂应用： ● 转染细胞：Huh7（肝癌细胞）、THP-1（单核细胞，分化为M0/M1/M2巨噬细胞）。 ● 转染基因： ◦ Huh7细胞：过表达BAMBI（BAMBI质粒）、敲低BAMBI（shR-BAMBI）。 ◦ THP-1细胞: 实现了BAMBI基因的过表达和敲低，进而影响了巨噬细胞的极化状态，表明BAMBI基因在促进M1巨噬细胞极化中扮演重要角色。 5. 实验数据与解读： ● Huh7细胞转染（图4A）： ◦ 过表达BAMBI显著上调SLC2A1、PIGQ、PKM、LDHA（糖酵解基因）及SIRT1、ACACA（脂代谢基因）； ◦ 敲低 ◦ 作用：证明BAMBI直接调控巨噬细胞M1极化。 6. 合规性说明：以上内容严格遵循学术规范，数据引用均来自原文公开信息，未涉及版权争议。
29710编辑于 2025-06-16ZETA life转染试剂助力揭示lncRNA Gm28309在RAW264.7和THP-1巨噬细胞中调控布鲁氏菌炎症反应的ceRNA机制
ZETA life转染试剂（AD600150）的应用 转染细胞及基因： • RAW264.7细胞（小鼠巨噬细胞系）： ◦ 转染基因：lncRNA Gm28309过表达质粒（Gm28309-pcDNA3.1 • THP-1细胞（人单核细胞系，经PMA诱导为巨噬细胞）： ◦ 转染基因：siRNA靶向候选lncRNAs（如P33714、P3852等）。 4. 转染实验数据及解读 具体实验数据： 1. RAW264.7细胞转染Gm28309（图4A, 4D）： ◦ 结果：过表达Gm28309显著降低NLRP3炎症小体蛋白（NLRP3、Pro-caspase-1）和炎性因子（IL-1β、IL-18） THP-1细胞转染siRNA靶向lncRNAs（图3A, 3B）： ◦ 结果：敲低P33714（Gm28309人源同源物）增加IL-1β/IL-18分泌，促进布鲁氏菌清除（p<0.01）。 • 低细胞毒性保障了炎症相关基因表达的精准检测。
35010编辑于 2025-05-23- 来自专栏生命科学
实验操作 | 质粒构建、转化、提取、鉴定、转染、测定（完整版）| MedChemExpress (MCE)
2分组(1) 正常对照组 (C)：正常培养 SH-SY5Y 细胞。(2) 阴性对照组 (NC)：SH-SY5Y 细胞转染阴性对照质粒。 (3) 过表达组 (PC)：SH-SY5Y 细胞转染过表达质粒。 3转染细胞铺板 24 h 后，按照 Lipofectamine 说明书用其进行转染。 转染 48 h 后，荧光显微镜下观察其 GFP 的表达情况及统计其转染效率 (对明场及暗场荧光细胞计数，得：转染效率 = 暗场荧光细胞个数 / 明场细胞个数；也可通过流式等观察统计其转染情况)。 结果显示，阴性对照组和 Parkin 过表达组细胞内可观察到较多的绿色荧光蛋白表达，而正常组细胞没有观察到，则质粒成功转染至细胞内。图 5. 转染后荧光显微镜下观察绿色荧光蛋白的表达[1]。A. 另外，RT-PCR 的溶解曲线 (Melt Curve) 分析结果显示，扩增产物的特异性良好，40 个扩增循环中没有引物二聚体的产生，溶解峰为 79.16 ℃ (图 6)。图 6.
1.9K11编辑于 2024-06-28 - 来自专栏转染
LONZA 4D核转技术--查找适合自己实验的程序
以下内容及截图信息来源于LONZA官网，此知识主要为自己学习所用，如有错误，还请多多批评指正~之后会根据自己的实际应用再进一步完善和更正定义：转染技术是细胞生物学中经常用到的处理手段将DNA、RNA、核糖核蛋白 （RNPs）或蛋白质引入细胞以改变其基因组成或功能——这一过程称为转染——在许多生命科学应用中是必不可少的。 1.电转对细胞损伤大，也需要足够量的细胞基数，不适用于微量细胞；2.脂质体转染主要适用于贴壁细胞，原代悬浮细胞不适用。LONZA 4D核转技术相对而言更适用于原代悬浮细胞。 Nucleofector®技术是一种改进的电穿孔方法，能够高效转染原代细胞，干细胞，神经元和细胞系。 关于敲除程序的选择，可以在LONZA官网查找LONZA官网给出了很多转染技术以及不同细胞类型的转染具体信息，可参考下面的网址Knowledge Center | Lonza例如DC细胞的转染protocol
35310编辑于 2024-12-02 【辰辉创聚生物】基因过表达细胞系 | 稳定过表达开发 | 高表达克隆筛选
科研实验中，高效转染是确保足够比例细胞获得外源基因的技术前提。 常见的转染方式包括：脂质体介导转染：通过阳离子脂质体与核酸形成复合物，被细胞吞噬后释放至胞内；电穿孔法：利用短暂电脉冲在细胞膜上形成可逆孔洞，使DNA直接进入细胞；病毒介导转导：借助病毒载体将目的基因高效导入细胞并实现基因组整合 在这些技术中，转染试剂的选择和使用对转染效率、细胞状态以及后续筛选效果具有直接影响，是过表达细胞系构建中不可忽视的技术环节。3. 其基本原理是：外源表达单元中包含抗性基因；转染后向培养体系中加入对应抗生素；未成功整合外源序列的细胞因缺乏抗性而被淘汰；存活细胞群体即为候选过表达细胞群。 6. 细胞培养与支持条件基因过表达细胞系的稳定维持还依赖于适宜的细胞培养环境。基础细胞培养基、胎牛血清（FBS）及必要的添加因子，为细胞的增殖和蛋白表达提供基础支持。
11710编辑于 2026-02-03【辰辉创聚生物】CHOHEK293抗体表达平台｜高效哺乳动物细胞表达｜快速重组抗体生产
HEK293表达系统则更灵活，转染效率高，适合做抗体快速表达和初期筛选。不同细胞系有各自的特点和适用场景，选择合适的哺乳动物细胞表达平台对后续的抗体质量和产量都有重要影响。 瞬时转染技术的优势瞬时转染是快速表达重组抗体的常用方法。通过把抗体基因片段导入细胞，不用建立稳定株，就能在几天内获得大量蛋白。这对于抗体快速表达和功能验证很有帮助。 尽管表达时间短，但如果优化转染条件，依然可以获得不错的产量。稳定细胞株构建相比瞬时转染，稳定细胞株构建更适合长期抗体生产。过程包括载体整合、筛选单克隆细胞、表达验证等。 抗体表达平台依托CHO和HEK293等哺乳动物细胞表达系统，结合瞬时转染和稳定细胞株构建技术，可以满足从抗体快速表达到大规模生产的不同需求。 Q2: 瞬时转染技术如何保证抗体快速表达的效率？A: 瞬时转染通过优化转染试剂、质粒载体设计及细胞状态，最大化表达效率。虽然表达时间短（通常数天），但可快速获得高水平抗体，适合筛选和早期实验。
40600编辑于 2025-08-06基因过表达细胞系构建与应用全攻略 | 稳定转染技术 | 功能验证方法 | 细胞模型构建 | 蛋白表达优化
相较于瞬时转染，稳定过表达细胞系具有表达稳定性高、细胞群体均质性好、实验结果可重复性强等技术优势，已成为基因功能研究、信号通路解析和药物靶点验证等领域的标准化研究工具。 第二阶段：细胞转染与筛选选取适宜宿主细胞（如HEK293、CHO或特定细胞系），采用脂质体转染、电穿孔或慢病毒转导等方法导入表达载体。转染48-72小时后，添加相应抗生素进行筛选。 获得单克隆后，需在24孔板、6孔板及培养皿中逐步扩增。第四阶段：表达水平鉴定通过qRT-PCR检测mRNA表达水平，Western blot分析蛋白表达。 细胞表型分析：增殖速率检测：CCK-8或MTT法细胞周期分析：流式细胞术PI染色凋亡检测：Annexin V/PI双染迁移侵袭能力：Transwell实验技术要点与优化细胞选择考虑因素：转染效率：HEK293 细胞转染效率通常高于其他细胞系蛋白加工能力：CHO细胞适合复杂蛋白的正确折叠和修饰研究背景相关性：选择与研究领域匹配的细胞模型表达水平优化策略：启动子优化：不同细胞系对启动子响应存在差异基因密码子优化：
36410编辑于 2026-01-13【辰辉创聚生物】稳定细胞系构建｜蛋白表达细胞株｜高表达细胞株
在构建过程中，选择合适的宿主细胞、表达载体设计、转染方法、筛选单克隆细胞株及表达优化，是保证蛋白表达细胞系质量的关键步骤。 2. 宿主细胞与表达系统 使用最多的宿主细胞包括CHO细胞系构建和HEK293稳定表达系统，两者均为哺乳动物细胞，具备良好的蛋白折叠和人源化糖基化能力，广泛应用于定制细胞系和转染稳定细胞株开发。 表达载体通常设计为双基因表达系统，确保轻链与重链同步表达，搭配强启动子和筛选标记，提高转染效率及筛选成功率。 4. 转染与筛选技术 转染技术主要分为瞬时转染和稳定转染两类。 稳定转染通过抗性药物筛选，获得持续表达的细胞株。筛选阶段重点在于利用药物筛选结合单克隆挑选，确保获得单克隆细胞株。 现代技术结合自动化筛选平台，加速高效筛选高表达细胞株，显著提升筛选效率与表达水平。 A:基因整合细胞系表达稳定，适合长期培养和生产；瞬时表达周期短，但表达不稳定。 Q5：转染稳定细胞株有哪些常用方法？ A:常见方法包括脂质体转染、电穿孔及病毒介导转染等。
40610编辑于 2025-09-18- 来自专栏芒果先生聊生信
芒果实验室，293细胞背景
293细胞的衍生细胞可分为数种，比如293T细胞，293A细胞，293E细胞，293FT细胞等等。有网友总结说，293A是用来包腺病毒的，293T是用来包慢病毒的。 总体而言，293细胞容易转染，是实验室最常用的表达兴趣基因的细胞株。 HEK293细胞是原代人胚肾细胞转染5型腺病毒DNA（Ad 5 DNA）而得到的永生化细胞，表达稳转的Ad5 DNA的基因，不易贴壁，表达E1A蛋白。 293T细胞容易转染，用磷酸钙、PEI或脂质体转染，效率均可达90%以上。 is derived from the 293F Cell Line and stably expresses the SV40 large T antigen from the pCMVSPORT6TAg.neo
1.8K20发布于 2020-06-28 【辰辉创聚生物】一文读懂基因过表达细胞系基因 | 过表达细胞系构建全流程解析 | 稳定转染技术 | 载体设计优化
宿主细胞选择与准备细胞系选择标准常用的宿主细胞系包括HEK293、CHO、HeLa等，选择依据包括：细胞的转染效率、增殖速率、蛋白加工能力及实验目的特异性要求。 细胞培养质量控制在转染前需对细胞状态进行严格评估，包括细胞形态观察、生长曲线测定和支原体检测。细胞传代次数应控制在适当范围内（通常不超过20代），以保证细胞状态的稳定性。 转染前24小时将细胞以适宜密度接种，确保转染时细胞处于对数生长期，达到最佳转染效率。基因导入与筛选流程转染技术选择与优化根据细胞类型和研究需求，可选择脂质体转染、电穿孔或病毒转导等方法。 脂质体转染适用于大多数贴壁细胞，操作简便但转染效率因细胞类型而异。电穿孔技术对悬浮细胞和难转染细胞系效果显著，但需优化电压、脉冲时间等参数。 表达验证与稳定性评估蛋白表达验证采用Western blot技术检测目标蛋白表达，需设立未转染细胞和空载体转染细胞作为阴性对照。对于分泌型蛋白，可使用ELISA法检测培养上清中的蛋白浓度。
22910编辑于 2026-01-16
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