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  • 来自专栏R语言数据分析

    表达芯片数据分析3——基因差异分析绘制火山图及差异基因热图

    差异分析芯片差异分析所需要的输入数据图片 fviz_pca_ind(iris.pca, geom.ind = "point", # show points only (nbut ,差异基因或者组内差异较大的基因;g = names(tail(sort(apply(exp,1,sd)),1000)) #day7-apply的思考题n = exp[g,]library(pheatmap ))(100), scale = "row", #按行标准化,只保留行内差别,不保留行间差别,会把数据范围缩放到大概-5~5之间 breaks = seq(-3,3,length.out = 100) #设置色带分布范围为-3~3之间,超出此范围的数字显示极限颜色 ) ? pheatmap# 关于scale的进一步学习:zz.scale.R芯片分析后的数据整理:图片二分组差异分析rm(list = ls()) load(file = "step2output.Rdata"

    1.1K10编辑于 2023-10-02
  • 来自专栏Y大宽

    TBtools基因家族分析详细教程(3)基因家族成员的进化分析1

    ),进化树美化 3从进化水平分析motif模式 4从进化水平分析domain 5从进化水平分析基因结构变化 6合并分析以上三者 ---- 1多序列比对与可视化 下载Mega 导入42家族序列信息 image.png 3从进化水平分析motif模式 ? image.png 如下 ? image.png 结果如下 ? image.png !! 同一个分支上的motif模式应该很相似,如果不是,考虑是否序列不完整,没注释好可以补正后再进行重新分析。 暴力的方法是直接删除可疑成员,不建议! image.png 4从进化水平分析domain ? 结果如下: ? image.png 另外,TBtools支持环形展示 ? image.png 5从进化水平分析基因结构变化 ? image.png 6合并分析以上三者 ? image.png 结果如下 ? image.png 也可以如下展示 ? image.png

    15.1K55发布于 2018-10-08
  • 来自专栏Y大宽

    TBtools基因家族分析详细教程(3)基因家族成员的进化分析2

    基因-共线性的定义与常见算法原理 物种内的共线性分析 文件准备(物种比对到自身的.blast文件,物种基因信息文件.gff文件),运行MCScanX,输出collinear和tandem文件 基因家族成员的来源分析 (如何复制得到) 不同物种之间的共线性分析 共线性分析结果可视化 ---- 1 共线性分析:与同线性的联系 用途: 识别直系同源gene 蛋白编码基因注释 发现进化事件 2物种内的共线性分析 3基因家族来源分析 4不同物种之间的共线性分析 共线性分析 数据文件下载genome.fa,gff3,protein.fa 2数据文件格式转换(TBtools) 3共线性分析 4解读文本输出结果 -----开始---- 1 2 获得所有基因的位置信息 ? 如下 ? 下面可以把刚才得到的blast结果文件简化,也可以不做,做的话,下面 ? 3 菠萝自身的比对的结果如下 ? circle gene view.300dpi.jpg 4不同物种之间的共线性分析 分析菠萝与水稻之间的共线性区块 需要菠萝的所有蛋白序列比对到水稻的所有蛋白序列 两个基因组的所有基因的位置关系 按前述步骤分别得到水稻的

    25.8K36发布于 2018-10-08
  • 来自专栏菜鸟学数据分析之R语言

    基因芯片数据分析

    左上图为原始图像,右上图为权重图,左下图为残差图,右下角为残差符号图 1 什么是RLE箱线图 相对对数表达(RLE)箱线图可以反映对照组和实验组之间,大部分基因的表达量是否保持一致,RLE定义为一个探针组在某个样品的表达值除以该探针组在所有样品中表达值的中位数后取对数 质量可靠的样品,标准差十分接近,NUSE值接近1,反之偏离1的位置,有种极端情况,大多数芯片有质量问题,但是标准差十分接近,反而会显得没有质量问题,所以这时候,必须结合RLE与NUSE两个图进行可靠分析 3 RNA降解你听说过? 反正我是听说过,但是不会用。 RNA降解是影响芯片数据质量的重要因素,RNA是从5端开始降解,理论上5端的荧光强度低于3端的荧光强度,降解曲线的斜率越小,说明降解的越少;反之越多。 从图中可知,CLL3对应曲线几乎平行于横轴,可能严重降解,需要去除。

    1.2K50发布于 2020-08-06
  • 来自专栏生物信息云

    基因芯片数据挖掘分析表达差异基因

    也可以是G(绿色,Cy3,代表对照组)。 2)芯片数据清理:经过背景校正后的芯片数据中可能会产生负值,还有一些单个异常大(或小)的峰(谷)信号(随机噪声)。 填补缺失值(k临近法):利用与待补缺基因距离最近的k个临近基因的表达值来预测待填补基因的表达值。 ? 3)提取芯片数据的表达值:由于芯片数据的小样本和大变量的特点,导致数据分布呈偏态、标准差大。 5) 差异基因表达分析: 经过预处理,探针水平数据转变为基因表达数据。为了便于应用一些统计和数学术语,基因表达数据仍采用矩阵形式。 ? A.芯片数据的差异分析主要包括三种方法: 1. 参数法分析(t检验):当t超过根据可信度选择的标准时, 比较的两样本被认为存在着差异。但小样本基因芯片实验会导致不可信的变异估计,此时采用调节性T检验。 3. 这两个都属于R包,其相同点在于都是对count data数据进行处理,都是基于负二项分布模型。 3.

    3.5K60发布于 2019-08-07
  • 来自专栏菜鸟学数据分析之R语言

    limma对基因芯片数据基因差异表达分析

    CEL 0 1 CLL23.CEL 1 0 CLL24.CEL 0 1 CLL2.CEL 0 1 CLL3.

    1.2K40发布于 2020-08-06
  • 数据分析:宏基因数据的荟萃分析

    数据分析:宏基因数据的荟萃分析​介绍宏基因数据的荟萃分析是一种综合多个独立宏基因组研究结果的方法,目的是揭示不同人群或样本中微生物群落的共同特征和差异。 运行荟萃分析数据分析:宏基因数据的荟萃分析运行荟萃分析computeANCOMBC获得每个数据集的线性模型结果(lfc和SE统计量用于荟萃分析)lfc可以认为是Standardized Mean Difference 数据分析:宏基因数据的荟萃分析​可视化结果采用森林图展示结果,该结果包含效应值RE的95%置信区间和对应的P值。 :宏基因数据的荟萃分析数据分析:宏基因数据的荟萃分析结果:荟萃分析筛选到21种差异微生物。 总结数据分析:宏基因数据的荟萃分析

    78310编辑于 2024-08-15
  • 来自专栏生物信息云

    基因芯片数据分析(四):获取差异表达基因

    基因芯片当中提取生物学的信息需要合理的统计学方法。人们已经为优化传统统计学方法在基因芯片方面的应用做出了多年的努力。 然而对于大多数生物学工作者而言,学习和使用一种或者多种统计分析手段并不一定非常容易,这需要付出时间和努力。Bioconductor的很多软件包很好的避免了人们为学习统计分析手段而付出的时间。 使用limma来分析差异表达的基因,主要分几步走: 读取数据 预处理数据 构建实验设计矩阵 使用线性模型估计差异表达的倍数 使用贝叶斯平滑标准差 试用不同的参数来输出差异表达基因结果。 因为前面几篇文章已经介绍了读取数据以及预处理的相关知识,这里我们直接使用Dilution数据来进行示例。 往期文章 基因芯片数据分析(一):芯片数据初探 基因芯片数据分析(二):读取芯片数据 基因芯片数据分析(三):数据质控 数据预处理 library(affydata) data(Dilution)

    2.7K32发布于 2019-12-13
  • 来自专栏数据科学(冷冻工厂)

    Scanpy 分析 3k PBMCs:寻找 marker 基因

    引言 本系列讲解 使用Scanpy分析单细胞(scRNA-seq)数据教程[1],持续更新,欢迎关注,转发! 寻找 marker 基因 来给每个细胞簇里差异表达明显的基因排个序。 再定义一个标记基因的列表,方便后面用。 adata = sc.read(results_file) 把每个簇 0、1、……、7 排名前 10 的基因在一个数据框里展示出来。 groupby="leiden"); 还有一种很简洁的小提琴图: sc.pl.stacked_violin(adata, marker_genes, groupby="leiden"); 在这个分析过程中 如果你想把文件分享给那些只打算用来做可视化的小伙伴,可以通过删除密集的缩放和校正数据矩阵来减小文件大小。不过别担心,文件里还是有 adata.raw 里用于可视化的原始数据的。

    38710编辑于 2025-06-09
  • 来自专栏单细胞测序

    单细胞测序—标准流程代码(3)—marker 基因富集分析_差异基因

    单细胞测序—标准流程代码(3)—marker 基因富集分析_差异基因过了很久之后才想起来继续整理单细胞测序的标准分析流程。 书接上回单细胞测序—标准流程代码(2) — 标记基因与细胞注释,这篇帖子主要关注的是富集分析。 scores 的作用筛选 Marker 基因:通过分析 scores,可以确定哪些基因在特定的细胞群中表现出显著的差异表达,从而筛选出潜在的 marker 基因。 那么由cosg得到marker基因富集出来的各种通路就都是上调的,而不存在下调。ps:猜想,不一定正确。问3:Reactome 通路与kegg的区别? 2 差异基因2.1 step3_deg_then_anno.R差异基因的选定与可视化主要在step3_deg_then_anno.R这个脚本中rm(list=ls())options(stringsAsFactors

    2.2K11编辑于 2024-09-04
  • 来自专栏育种数据分析之放飞自我

    表型数据基因数据--聚类分析

    下面看一下利用基因型SNP数据进行PCA计算,以及可视化的分析。 很多软件可以分析PCA,这里介绍一下使用plink软件和R语言,进行PCA分析,并且使用ggplot2绘制2D和3D的PCA图。 可以看到,三个品种在PCA图里面分的比较开,C品种的有两个A和B的点,应该是异常数据基因数据: 共有3个品种A,B,C,共有412个个体。 ,将其转化为0,1,2的形式 2,计算G矩阵 3,计算PCA的特征向量和特征值 4,根据特征值计算解释百分比 5,根据特征向量和品种标签,进行PCA的绘制 绘制代码如下: 首先,使用plink命令,将基因数据转化为 读取数据 m012 = fread("plink.raw") # 保留FID,IID和基因数据 g012 = m012[,-c(3:6)] dim(g012) fid = g012$FID iid lty.hide=2,lty.grid = 2) legend("topright",c("A","B","C"),fill=c('red','green',"blue")) 聚类分析思路

    2.7K20编辑于 2022-05-19
  • 来自专栏生物信息云

    基因芯片数据分析(三):数据质控

    每一个探针组都均匀包含了目标基因3’至5’不同区段特异序列。 经过PCA分析之后,平行实验所提供的基因芯片数据应该聚扰在一起,而不同设计的实验所提供的基因芯片数据应该分离。这可以帮助我们很快的识别出一组平行实验当中,有哪些数据是可靠的,而哪些数据可以被放弃。 经过gcrma处理数据之后,我们发现,数据中值基本为0,头尾的偏离也都被修正了。反过来说,我们对数据绘制MA plot可以直观化地显示实验数据进入下一步分析比较时的可靠性。 我们使用gcrma(rma的一种扩展)来对数据进行预处理,然后使用affycoretools库当中的plotPCA来进行PCA分析作图。 经过PCA分析之后,平行实验所提供的基因芯片数据应该聚扰在一起,而不同设计的实验所提供的基因芯片数据应该分离。这可以帮助我们很快的识别出一组平行实验当中,有哪些数据是可靠的,而哪些数据可以被放弃。

    3.6K31发布于 2019-12-13
  • 来自专栏生信菜鸟团

    肿瘤基因组测序数据高级分析--肿瘤基因组测序数据分析专栏

    简介 大多数肿瘤基因组综述类文章,对于数据分析部分只是介绍了基础分析部分,也就是从原始的 fastq 文件通过质控、比对、GATK流程、Call 变异最后得到 vcf 文件和拷贝数变异的结果就结束了。 主要可以分为以下几点: 显著突变基因 驱动突变基因 突变特征分析 肿瘤微卫星稳定性分析 肿瘤突变负荷TMB 肿瘤新抗原预测 局部显著性拷贝数变异 肿瘤纯度和倍性评估 肿瘤克隆进化分析 这些分析中也用到了很多工具 首先,将多个肿瘤样本的突变数据聚集在一起,然后计算每个基因的分数和 p 值。选择显着性阈值来控制错误发现率 (FDR),超过此阈值的基因则被报告为显着突变。 最初TMB通过全外显子测序(WES)进行检测表征,其本质上认为基因突变仅限于外显子(编码区);后来也有很多文章基于特定 Panel 数据评估 TMB,或者基于 ctDNA 数据评估 bTMB等,原理都一样 但是用于分析局部拷贝数变异显著性的软件,常用的就 GISTIC 软件,它是基于一组样品数据(WGS or WES)来分析局部显著拷贝数情况,即可以寻找显著性缺失和扩增的 gene 和区域,并将结果可视化的分析工具

    4.8K43发布于 2021-10-12
  • 来自专栏生信技能树

    基于全基因组的基因家族分析(1):数据准备

    1.基因组下载网站介绍 Sol Genomics Net:茄科基因组网络,里面包括了很多物种的基因组测序结果:番茄,土豆,茄子等。 而且基因组更新最快,搜索了一下发现NCBI番茄基因组和Phytozome番茄基因组为ITAG2.4,而SGN已经是最新版本的ITAG3.2,当然以前的版本也都存在,特别方便。 而Phytozome要下载这些数据居然还要注册,真的有点烦,偷偷告诉你,SGN貌似也要注册(这个大家应该都没有什么问题,就直接跳过)。 而且在后面分析基因家族的时候,会出现家族数量相差比较大,可能有10个左右的差距,新版本的基因会多。 SGN完整版基因组 2.序列相关文件下载 基础文件一般我们下载4个:CDS.fa、Protein.fa、GFF.gff3和Genome.fa # 小编在home目录下新建sra目录,所有数据都放在这个目录里面

    4.1K30发布于 2019-05-13
  • 来自专栏生信喵实验柴

    基因家族分析

    直系同源(同颜色)与旁系同源(不同颜色) 一个基因家族,一般存在于多个物种(不同物种中的叫亚家族基因),并且很多基因家族都是转录因子,可以对家族内基因启动子区域进行分析;还能找几个物种,分析同源基因基因结构 、motif 分析,找到保守的 motif;还可以结合湿实验 QRT-PCR,找出十几个或二十个基因做不同组织的表达量,看哪些基因具有较强的组织特异性表达性。 Motif 是在生物学中是一个基于数据的数学统计模型,典型的是一段 sequence 也可以是一个结构。 在线分析网站:http://meme-suite.org/tools/meme 基因功能结构域 四、基因结构分析 GSDS: Gene Structure Display 在线分析网站:http://gsds.gao-lab.org/ 基因结构分析可视化 五、系统发育树构建 利用 megax 对水稻中整个 Dynamin 基因构建系统发育树。

    3.8K30编辑于 2022-10-25
  • 来自专栏科研菌

    如何筛选基因加上简单分析就能3+分?

    同时,公开数据库中存储了大量癌症有关的信息,对这些数据的再分析有利于发现更多的生物信息学价值。 在这项研究中,作者重新分析了来自GEO和TCGA数据库的基因表达谱,并基于生物信息学方法确定了与CRC相关的基因和途径。此外,作者还开发了一个预测结直肠癌患者1年、3年和5年总生存率的临床模型。 表3 基因表达水平对CRC临床病理特征的影响 此外,Logstic回归分析了前五位上调和下调的基因与CRC患者的临床病理特征的相关性(表3)。 图5 前五位上调和下调基因表达水平与CRC患者MSI状态的关系 基于TCGA数据库,作者对前五位上调和下调的DEGs进一步深入分析。 小结 作者从GSE32323数据集中筛选出差异基因,选择上调和下调的前五位基因进行深入分析。作者通过GO和KEGG富集分析,鉴定了富集的9个GO项目和50个通路。

    1.1K40发布于 2020-08-20
  • 来自专栏简说基因

    基因数据智能生产及分析》笔记

    数据行业相关标准不完整 基因行业目前亟需要系统的、公认的数据标准,并以此建立通用的数据库,如此才能有效地将基因数据转化为价值。 3. 数据分析 基因数据分析,一般称为生物信息分析,核心工具是软件和数据库。其中,软件主要基于特定的分析需求而实现的完整功能的算法代码包;数据库是为特定功能分析建立的参考数据集。 基因数据生产 -> 生物信息分析 -> 基因数据解读是三个紧密配合的环节,每一个环节对从业人员的能力都有特殊的要求,通常对应三种不同的工作岗位,即实验技术人员,生物信息人员及报告解读人员。 3. (3)场景 基因数据场景的投资方向包括:基因数据应用扩展和数据维度的扩展。 3数据分析的效率和发现致病变异的能力是影响临床对该技术信息的重要因素,二者的提升取决于数据共享和工具优化。

    2K10发布于 2020-11-19
  • 来自专栏生信修炼手册

    基因数据CNV分析简介

    除了利用aCGH和snp芯片来检测CNV之外,也可以通过NGS数据分析CNV, 比如全基因组和全外显子测序。 针对全基因组CNV的检测,还针对开发了一种称之为CNV_seq的测序策略,指的是低深度全基因组测序,只需要5X的测序深度,就可以有效的检测CNV。 本文根据一篇2015年的综述来简单介绍下全基因组CNV分析的策略,文章标题如下 Whole-genome CNV analysis: advances in computational approaches 只利用了单端reasd, 读长进一步受到限制,所以该方法只适用于检测小规模的插入和缺失,采用该策略的部分软件列表如下 Pindel PRISM SVseq2 Gustaf 3. 综上所述,每种算法各有其优缺点,综合使用多种策略有助于提高检测结果的准确性和敏感性,同时设置对照样本,可以更加有效的分析拷贝数的变化。

    4.1K20发布于 2019-12-19
  • 来自专栏生物信息云

    基因芯片数据分析(二):读取芯片数据

    上一篇文章(基因芯片数据分析(一):芯片数据初探)中,我们对芯片数据分析进行了一下热身,接下来的文章我们就详细介绍,首先我们介绍分析过程中的第一步,数据的读取。 在microarray的处理中,第一步就是读取数据。无论是自己的保存在本地的数据,还是在线保存的数据,对于不同公司的芯片可以使用不同的软件包读取。 在这里,我们说的在线数据,主要是指保存在GEO (Gene Expression Omnibus) 数据库中的数据,当然GEO的数据可先下载后再读入。 对于Affymetrix Exon/Gene ST Arrays,我们不能使用affy包来读取,我们需要使用oligo或者xps来进行分析。这里介绍oligo包。 就是类似:a <- list(a=c(1,2,3)) 以后每次访问c(1,2,3),我都要写成a[[1]]这样,感觉不方便,于是 a <- a[[1]] 这样以后访问c(1,2,3)就只需要写成a就可以了

    5.2K11发布于 2019-12-13
  • 来自专栏医学生物信息

    基因芯片数据分析(一):芯片数据初探

    关于芯片数据分析,我们之前的文章 基因芯片概述 简单地讲,基因芯片就是一系列微小特征序列的(通常是DNA探针,也可能是蛋白质)的集合,它们可以被用于定性或者定量检查样品内特异分子的成份。 比如说,基因芯片可以检测几十个gene marker在细胞样品中的表达量。现在最常见的是用于整个基因组的表达量分析。 下图为历年来提交至Gene Expression Omnibus数据库的主流芯片厂商的芯片数据统计分布图(数据截止日期为2014年3月1日)。 这里不解释代码的含义,后面我们的教程会讲解,这里只是让大家对基因芯片数据分析有一个初步的认识。 处理Affymetrix的微阵列 ## 安装分析所需要的软件包。 " 数据 ## 以及实验设计。

    1.6K11发布于 2020-05-06
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