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TBtools | 获取基因代表序列、基因序列模式定位
本次介绍的是TBtools序列工具中的获取Fasta文件中的基因代表序列以及基因序列模式定位。 首先是Fasta Get Representative，该功能可以帮助我们在一个有多条序列的Fasta文件中提取出最长的代表性序列，用于下游分析。 输出结果： >CP60818.2 ACTAGCACGTGTGTGTGCATGCA >CP60819.1 ACGATCGACTAGCATGCATCGAT 重要提示：在这里最重要的一步是使用正确的正则表达式进行序列 http://tool.chinaz.com/regex 接下来介绍的是Sequence Pattern Locate，该功能可以在一个基因组文件中找到你需要的一段序列并定位其位置。 ID、起始坐标、终止坐标、匹配到的序列。
5.1K10编辑于 2021-12-31 - 来自专栏生物信息学
Ensembl快速下载基因的同源基因序列
直系同源因物种形成（speciation）而被区分开（separated）：若一个基因原先存在于某个物种，而该物种分化为了两个物种，那么新物种中的基因是直系同源的；旁系同源的序列因基因复制（gene duplication ）而被区分开（separated）：若生物体中的某个基因被复制了，那么两个副本序列就是旁系同源的。 由图可知，ensembl总共支持11中格式的序列下载，分别是CLUSTALW、FASTA、Mega、MSF、Nexus、OrthoXML、Pfam、Phylip、PhyloXML、PSI、Stockholm 可以适用于不同的软件，我们选择最常规的FASTA格式进行下载，然后在FASTA格式里选择 Unaligned sequences – proteins 这一项，之后点击红框中的 Download 按钮对MYH9基因的同源基因的蛋白序列进行下载 可能有人会问只有序列怎么通过ensembl寻找同源基因，这个可以通过Ensembl的BLAST/BLAT功能来寻找序列对应的基因，BLAST/BLAT功能的位置在下图的红框中进行标出： ?
7K50发布于 2020-04-14 - 来自专栏生物信息学、python、R、linux
Fimo扫描基因组序列
在做motif分析时，经常用Fimo扫描基因组序列得到motif对应的序列位置，进而进行下一步的分析。说明文档可参考：http://meme-suite.org/doc/fimo.html ? motif file sequence file是序列文件，用全基因组还是提出来的基因组片段都可以。 其他参数还有： ?
2.8K10发布于 2020-04-01 - 来自专栏生信菜鸟团
详解 Python 批量下载基因序列
对于分析比对多个基因序列文件时的工作量说多了都是泪。比如，老板让你比对自己测定序列与 NCBI 库中序列，并构建相应的进化树，而这个序列需要大于100条。 我想你的心情不会和下载一条序列时那么平静，那么，接下来通过BioPython提供的接口来实现快速的自动化序列下载。 自动获取基因序列数据 0. 利用 Nucleotide 数据库来查询所有 oct4 基因的序列数据，为了展示基础的流程，这里采用逐条下载的方式 from Bio import Entrez,SeqIO # 参数设置 Entrez.email = "your_email@163.com" Entrez.tool = "getGeneSeqScript" # 查询 oct4 基因的在 Nucleotide 中的总数 hd_egquery Entrez.esearch(db="nucleotide", term="oct4", retmax=total) read_esearch = Entrez.read(hd_esearch) # 这里我们只取前两个序列
2.4K40发布于 2021-04-13 - 来自专栏百味科研芝士
单基因结合全基因组发6分SCI
文章主要是研究h-prune这个基因在肝细胞癌（HCC）中的临床意义及潜在调控机制，从全基因组层次对h-prune基因进行全面研究。 结果显示肝癌组织中h-prune的表达量高于邻近的正常组织（图A），Western blot检测了6例人肝癌组织和配对正常组织中h-prune的表达，发现在肝癌组织中h-prune显著上调（图B）。 2.3 h-prune高表达与低表达患者突变及CNV分析 h-prune高表达的肿瘤在RPS6KA3中具有更高的突变频率（图A），已有文章证明RPS6KA3参与了细胞增殖过程。 这表明，与RPS6KA3和RB1突变相关的功能可能会被激活，这将有助于h-prune的过度表达。而图B表明不论h-prune的表达量如何，大部分细胞的染色体都发生了显著的扩增或缺失。 为了寻找h-prune上调后甲基化的重要靶基因，这里将肿瘤抑制基因与h-prune-high患者中的青绿色模块和下调基因重叠。
77011发布于 2020-03-04 - 来自专栏百味科研芝士
利用基因家族基因构建预后模型发6分+SCI
RGS基因家族与肿瘤干细胞的关系 RGS基因家族的整体表达量与mRNAsi负相关，RGS3、RGS5、RGS6、RGS9、RGS12与睾丸生殖细胞肿瘤呈显著负相关。基因表达水平越高，肿瘤干细胞越弱。 图1 RGS基因家族在不同免疫亚型和临床分期的表达水平 6. RGS21、RGS18、RGS4、RGS5、RGS3、RGS16的突变频率分别为2.4%、2.8%、1.6%、10%、7%、4%、4%、4%、4%、4%、4%、4%、4%、4%、3%、1.3%、4%（图6a RGS3和RGS4存在错义突变（图6b）。HPA数据库分析表明，RGS10、RGS11、RGS13在卵巢癌组织中高表达（图6c）。 ? 图6 突变分析和蛋白表达分析 免疫组化分析表明RGS3和RGS4在卵巢癌中高表达（图7）。 ? 图7 免疫组化分析 10.
1.2K40发布于 2021-07-12 - 来自专栏生信探索
基因序列变异信息VCF (Variant Call Format)
VCF是Variant Call Format的简称，是一种定义的专门用于存储基因序列突变信息的文本格式。在生物信息分析中会大量用到VCF格式。 的第一个碱基位置；第3列：ID dentifier； 突变的名称，比如dbSNP的名字第4列：REFreference base(s)；参考染色体的碱基第5列：ALTalternate base(s； 与参考序列比较 ，发生突变的碱基，可以有多个值，每个值用逗号分隔第6列：QUAL quality；Phred标准下的质量值，表示该变异位点的可靠性，可以理解为所call出来的变异位点的质量值。 ，用:分割，当有多个值时用,分割举个例子CHROM=chr1：一号染色体POS=13649：13649处REF=G：参考基因组上13649处的碱基为GALT=C：所有样本中基因组上13649处可能发生的突变为 位点的reads数为16=12+4GQ=64：GT=0/1（即基因型为G/C）时的质量值为64PL=64,0,281：最有可能的GT是0/1（即基因型为G/C），对应PL值为0，概率为1#CHROM
1.5K41编辑于 2023-05-23 - 来自专栏微生态与微进化
基因组CRISPR序列及Cas酶预测
在CRISPR特征序列附近还有一些CRISPR-associated基因，编码一系列Cas蛋白，合称CRISPR/Cas系统。 这样一来，一段新的间隔序列就被添加到了基因组的CRISPR序列之中，形成了对病毒DNA的免疫“记忆”。 这三类系统又可以根据其编码Cas蛋白的基因不同而分为更多的亚类。不同类型CRISPR/Cas系统完成干扰的步骤也有所不同。 02 CRISPR预测 原核生物基因组中可能多处存在CRISPR序列，其预测注释可以使用CRISPRfinder（http://crispr.i2bc.paris-saclay.fr/Server/）在线分析 与重复序列长度比的最大值，默认为2.5 -s：spacer之间相似度的最大值，默认为60 -cpuP：程序运行使用的CPU数目，默认为1 -meta：分析宏基因组序列 -gcode：密码子表，默认为大多数细菌所使用的密码子表
1.6K30编辑于 2022-05-05 - 来自专栏小明的数据分析笔记本
叶绿体基因组重复序列分析工具~REPuter
叶绿体基因组的文章通常都会做重复序列分析，其中会使用在线工具REPuter 来分析forward reverse complement palindromic 四种重复序列。 id=reputer_manual_manual 使用方法也很简单，直接上传fasta格式的序列，然后会有4个输入框需要填。分别是 重复片段的最大 最小长度。然后还有两个距离。 这两个距离是什么意思，现在我也不太清楚，可能是度量重复序列之间相似度的指标吧。我看到有论文里写会设置海明距离的。 然而自己在使用的时候一直会遇到报错， ? 不知道是什么原因，自己猜测是因为序列太长，在线版运行运算能力不够，所以尝试下载单机版REPuter，但是一直没有找到下载方法，无意间发现了vmatch程序，其中有一个perl脚本repfind.pl可以做 -f 和 -p 参数分别指定计算forward和palindromic重复，-h 海明距离3, -l 最小重复单位30bp 之前将以上的内容分享到了简书，今天有人留言说使用REPuter 做重复序列分析的时候
2.5K10发布于 2020-10-26 - 来自专栏生信小驿站
查询基因的核苷酸序列和蛋白的氨基酸序列
查询基因的核苷酸序列 （1）在pubmed gene数据库选择输入想要查询的基因，点击search即可。 ? （2）选择人类 ? （3）选择人FASTA ? （4）得到核苷酸序列 ? 查询基因的核苷酸序列 （1）首先得到基因的UNIprotKB identifier ? （2）在UniProtKB 数据库基于identifier搜索蛋白相关信息 ? （4）得到氨基酸序列 ?
2.9K30发布于 2020-06-05 - 来自专栏生信修炼手册
RepeatMasker:查找基因组上的重复序列
RepeatMasker软件用于查找基因组上的重复序列，默认情况下，会将重复序列原有的碱基用N代替，从而达到标记重复序列的目的。 除此之外，也可以采用将重复序列转换为小写或者直接去除的方式，来标记重复序列。 该软件将输入的DNA序列与Dfam和Repbase数据库中已知的重复序列进行比对，从而识别输入序列中的重复序列。 在Sequence中输入或者上传FASTA格式的DNA序列；Search Engine选择比对软件，Speed/Sensitivity选择运行模式，不同模式的主要区别在于运行速度与敏感度的差异，DNA 软件基本用法如下 RepeatMasker -pa 5 -small -species human chrM.fa -pa指定线程数，只有输入文件大于50Kb时才发挥作用；-small表示将重复序列转换为小写 运行完成后，会生成多个文件，后缀为masked的文件为标记重复序列后的文件，后缀为.out的文件保存了重复序列区间信息。
3.5K20发布于 2020-05-08 - 来自专栏微生态与微进化
宏基因组reads筛选：去除宿主序列
基于环境的复杂性与研究对象的不同，宏基因组数据在组装之前常需要过滤掉一些序列以防干扰研究。例如要研究动植物组织或肠道的微生物组，往往需要去除宿主的DNA序列。 假如研究的是人类肠道微生物的宏基因组，需要去除属于人基因组的序列。具体方法为将质控后的序列和人类基因组序列进行比对，将比对上的序列去除。 宏基因组reads筛选：去除宿主序列 测序数据的组装：常用软件工具 更新中…… 短序列有参比对常用的软件有BWA、Bowtie、BBMap等。下面以Bowtie 2为例。 _latest_genomic.fna.gz bowtie2-build --threads 20 GRCh38_latest_genomic.fna human_genome 运行结束后，生成6个文件 ，根据序列信息，将原始数据中包含有宿主基因组的序列去除： 其中第一列为参考基因组染色体或scaffold名称，第二列与第三列为read在该染色体或scafflold比对的起始与终止位置，第四列为比对上的
4.3K30编辑于 2022-05-05 - 来自专栏生信小驿站
单基因生信分析流程（6）单基因相似性分析
)) count_matrix[1:4,1:4] fpkmToTpm <- function(fpkm) { exp(log(fpkm) - log(sum(fpkm)) + log(1e6) barcode)] setwd('D:\\SCIwork\\F20ELFN1\\COAD') save(mRNA_exprSet, file = "mRNA_exprSet.Rda") 第四步，根据基因表达量筛选一些基因
1.2K21发布于 2020-08-13 - 来自专栏数据挖掘
数据挖掘—UCSC中获取某基因的启动子序列及基因结构剖析
数据挖掘—UCSC中获取某基因的启动子序列及基因结构剖析关于获取某基因的启动子序列，我之前已经有两篇帖子进行介绍了，见数据挖掘—NCBI中获取某基因序列和转录起始位点MSP甲基化引物设计最近遇到实验室的一个需求 前期我们需要获取JAK1、JAK2基因的启动子序列。这里介绍使用UCSC获取启动子序列的方法，更为方便。 关于这一点，chatgpt尝试向我解释，可能是是UCSC在输出序列时候做了相应的转换。综上，不管是正链基因还是负链基因，UCSC输出的启动子序列都是右侧序列更靠近TSS。 ，UCSC输出的启动子序列都是右侧序列更靠近TSS3.复制全部序列，到一个TXT文本，再将文件后缀改为fasta即可4.操作截图JAK1JAK25.基因结构剖析一个基因在DNA上的基本结构#一个基因在DNA 内含子（Intron）：存在于基因转录本中但在RNA剪接时被剪去的序列。不编码蛋白质。可含有调控序列，影响剪接选择或转录调控。外显子（Exon）：保留在成熟mRNA中的序列。
1.9K11编辑于 2025-10-20 - 来自专栏Reinvent Data Science
用 AI 识别基因，从向量化 DNA 序列开始
基因序列分类 输入未知类别的 DNA 序列，在 Milvus 数据库中搜索与其相似的序列便可以对搜索对象进行基因分类，以此了解其可能的功能。 示例中的模型对未插入集合的人类基因序列进行搜索，成功根据搜索结果返回了正确的基因类别，证明了 Milvus 的向量相似性搜索能够分类基因序列。 适配硬件：受到传统的生物分子序列比对算法限制，基因序列相似性搜索无法受益于硬件(CPU/GPU)的发展[6][7]。 疾病诊断：临床上一般是对比检查对象与健康人的基因序列，找出可引起疾病的变异基因。[9] 在疾病对应的基因位置得到序列，根据健康与否、严重程度或疾病类型将大量的样本数据分类。 www.kaggle.com/nageshsingh/dna-sequence-dataset https://baike.baidu.com/item/G%E8%9B%8B%E7%99%BD%E5%81%B6%
1.6K21发布于 2021-08-20 - 来自专栏生信技能树
m6A图文复现03-测序数据去除rRNA序列并且比对到参考基因组
下面是MeRIP-seq 图表复现笔记 在上一期：m6A图文复现02-数据下载和质控 中我们得到了cleandata，接下来是要比对到参考基因上进行比对过程的分析。 一般来说，在比对之前，我们可以选择先去除rRNA序列然后再与参考基因组进行比对，文章中采用的策略也是如此： ? 那么你或许会有以下几个随着而来的问题： 1.为什么测序数据中会出现rRNA？ ref：Front Genet. 2015 Jan 26;6:2 rRNA在参考基因组上存在多个copy（https://www.britannica.com/science/nucleic-acid/ 二、去除完rRNA之后，接下来就是与参考基因组的比对了 1.参考基因组下载 这里我们使用ensembl数据库的参考基因，下载方式如下 1.进入网址：http://ftp.ensembl.org/pub/ 2.建索引 由于m6A数据是RNA测序，因此我们这里使用适用于RNA比对的软件Hisat2进行比对，那么，建立Hisat2的参考基因组索引为： # 注意Homo_sapiens.GRCh38.dna.primary_assembly
4K20发布于 2021-07-29 - 来自专栏生物信息学
一文搞定参考基因组序列下载
生物信息学的分析很大一部分都是围绕序列展开，可以说序列分析催生了生物信息学。比如通过与参考基因组序列进行比对，检测各种变异；RNA-seq数据与参考基因组比对，进行定量。 今天给大家介绍如何下载某一个物种的参考基因组序列，分为浏览器版与命令行版2种方式。 浏览器版 通过NCBI的genome数据库下载。 比如我要下载人类参考基因组序列，打开https://www.ncbi.nlm.nih.gov/genome ,在搜索框中输入human, 会出现很多关键词提示，我们选择第一个（这是human的双名法名字 ）如下图 点击搜索，返回的结果页面包括人基因组的各种基本信息，比如每一条染色体的大小、GC含量、基因数目、假基因数目、编码的蛋白质数目。 当然我们的目的是下载参考基因组序列，其他信息先不管，结果页面最上面的部分显示了参考基因组的DNA，转录本，蛋白质三种类型的FASTA序列下载地址，如下所示 点击genome就可以下载了。
3.2K20发布于 2020-04-14 - 来自专栏简说基因
模糊匹配：让基因序列分析不再「看走眼」
在基因组学研究中，迅速锁定特定的核苷酸序列模式是至关重要的步骤。 作为欧洲生物信息所的经典工具，Fuzznuc凭智能算法和灵活规则，成为基因序列分析的标准。 功能特点 1. 6. 参数可定制 提供丰富的参数设置选项，可根据研究对象的特点和研究目的调整匹配的严格程度等。 应用场景：从科研到临床 从基础研究到临床应用，fuzznuc在以下场景持续发光发热： 1. 进化研究 比较不同物种的同源序列，分析保守区域的变异模式，推测功能重要性。 5. 重复序列与转座元件分析 6. 总结 Fuzznuc用创新模糊序列解析技术推动基因编辑研究，深入解析罕见变异与微生物组复杂基因。它适用于病毒进化、微生物群落分析及基因家族鉴定。
31510编辑于 2025-02-25 - 来自专栏Y大宽
查找一个基因的启动子序列
启动子通常位于转录起始位点（transcription start site，TSS）或第一个exon的上游 其次，找gene的TSS 对于注释好的物种的基因组，就很好找其promoter sequence
5.7K20发布于 2018-12-13 - 来自专栏R语言交流中心
R语言实现基因序列的匹配和比对
2. complement() 获取互补的序列 ? 3. reverseComplement() 获取反向互补的序列 ? 6. letterFrequencyInSlidingView() 函数主要是获取在指定长度序列中各字符的频率，并且将此指定长度作为窗口进行下移一个碱基，直至计算整个序列。 单模式匹配主要包含以下函数： matchPattern()：1个查询模式1条序列 countPattern()：1个查询模式1条序列，仅计数 vmatchPattern()：1个查询模式n条序列 vcountPattern ()：1个查询模式n条序列，仅计数 ? 多模式的匹配函数如下： matchPDict()：n个查询模式1条序列 countPDict()：n个查询模式1条序列，仅计数 vmatchPDict()：n个查询模式n条序列 vcountPDict(
8.1K40发布于 2019-07-31
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