其中最常用、最经典的技术就是AnnexinV结合/碘化丙啶(PI)双染法。01/核心原理:AnnexinV:识别早期凋亡细胞。 碘化丙啶(PI):识别晚期凋亡和坏死细胞。PI是一种核酸染料,不能透过完整的细胞膜。只有当细胞膜完整性丧失(晚期凋亡或坏死)时,PI才能进入细胞,与DNA/RNA结合发出荧光。 (处理组和对照组)-1xAnnexinV结合缓冲液(通常由试剂盒提供或自配:10mMHEPES,140mMNaCl,2.5mMCaCl₂,pH7.4)-FITC(或其他荧光素)标记的AnnexinV-碘化丙啶 (去除残留培养基和血清)重悬于结合缓冲液:用适量的1xAnnexinV结合缓冲液(通常100-500μL)轻柔重悬细胞沉淀,制备成单细胞悬液。避免剧烈吹打产生气泡!将细胞悬液转移到流式管中。 如果用含EDTA胰酶,必须彻底洗净EDTA(多洗几次)才能进行AnnexinV染色。钙离子依赖AnnexinV结合缓冲液必须含有足够浓度的Ca²⁺(通常2.5mM)。确保缓冲液新鲜配制或保存得当。
碘化丙啶 (Propidium Iodide, PI) 染色液是一种不能穿透细胞膜的红色荧光染料,可对凋亡晚期细胞及坏死细胞染色。 经 Annexin V-FITC 和 PI 联合染色后,正常细胞基本无荧光 (Annexin V-/PI-),早期凋亡细胞呈绿色荧光 (Annexin V+/PI-),晚期凋亡细胞及坏死细胞则呈绿色和红色荧光 相关产品细胞凋亡与坏死检测试剂盒采用 Hoechst 33342 和碘化丙啶 (Propidium Iodide, PI) 双染的方法快速检测细胞凋亡与细胞坏死。 细胞周期与细胞凋亡检测试剂盒采用碘化丙啶 (Propidium Iodide, PI) 染色的方法检测细胞周期和细胞凋亡。 Annexin V-EGFP/PI 细胞凋亡检测试剂盒Annexin V-EGFP 和 PI 联合染色后,正常细胞基本无荧光 (Annexin V-/PI-),早期凋亡细胞呈绿色荧光 (Annexin
AbMole推出的Calcein-AM/PI活死细胞双染试剂盒(AbMole,M55257),专为解决这些痛点而设计,它的检测原理基于两种荧光染料:Calcein-AM和碘化丙啶(PI),能够快速、准确地区分活细胞和死细胞 一、检测原理Calcein-AM/PI活死细胞双染试剂盒(AbMole,M55257)内含有Calcein-AM和Propidium Iodide(PI,碘化丙啶),Calcein AM 是在传统的钙黄绿素 由于死细胞缺乏上酯酶,不能或很少能产生Calcein,因此仅活细胞会被染色为强绿色荧光,死细胞不能被染色。 因此,上述两种染料的联合使用,可以对活细胞与死细胞同时进行双重荧光染色,用于实验中细胞活性或细胞毒性的检测。 活死细胞染色试剂盒的检测原理二、优势AbMole的Calcein-AM/PI活死细胞双染试剂盒(AbMole,M55257)具有多种优势,主要包括以下几点:快速检测:操作简单,染色过程仅需40分钟左右,
碘化丙啶(Propidium Iodide, PI)是一种核酸染料,它不能透过完整的细胞膜,但对凋亡中晚期的细胞和死细胞,PI能够透过细胞膜而使细胞核染红。 过200目筛网,滤液以1000r/min离心弃上清,再用冰冷的PBS液重悬细胞。用台盼蓝染色计数活细胞数,细胞存活率应在95%以上,调整细胞浓度至1×105—1×106个/ml之间。 2. 本实验中设有四个对照组,分别为:空白对照、FITC对照、PI对照、FITC and PI对照,其余待测样品均加入10μl Annexin V-FITC和5μl PI,轻轻混匀,避光室温反应15分钟(或37 特殊细胞的染色方法:在消化或吹打时,有些细胞(如神经元细胞)很容易受到损伤,导致晚期凋亡或坏死比例非常高,不能反映真实结果。 实验的解决方法:先低速离心,吸取细胞培养板中的液体,留少许液体,加入适量PI和Annexin-V染色10min后,将漂浮细胞吸至离心管中,离心洗涤两次,用PBS漂洗贴壁细胞两次,加胰酶消化后将细胞悬液移至另一离心管中
如:0.2% TritonX 100, TUNEL检测试剂盒(包含 10×TdT 酶浓缩液、荧光素标记的 1×dUTP、转化剂POD),DAB 试剂盒, 3%过氧化氢甲醇,磷酸缓冲液 PBS 等。 DAB 染色 取出载玻片,用滤纸擦去周围多余的PBS。滴加新鲜配制的 DAB 工作液,结合显微镜下观察背景颜色变化,控制显色时间。底面出现适量黄色时,将载玻片放入盛有蒸馏水的切片缸内,水洗终止显色。 目前流式细胞仪检测细胞凋亡已逐渐成为趋势,利用Annexin V-FITC和PI染色, 流式细胞仪检测早期凋亡率。Annexin V -FITC检测凋亡。 Annixine V-FITC是一种标记有荧光素的钙依赖磷脂结合蛋白,与PS有很强的亲和力,可特异性与PS结合,凋亡早期细胞仍保持膜的完整性,碘化丙啶(PI)不能进入细胞内,坏死细胞细胞膜破裂,只能被PI 染色。
减少细胞结团率 细胞计数需要对整个细胞悬液中的少量样本进行分析,因此必须注意确保样品能够代表原始整个单细胞悬液。 细胞裂解可能是由于过度生长、过度移液的机械剪切或冷冻/解冻循环等因素造成的,而胰蛋白酶消化不足或过度也可能导致样品的异质性。 然而,使用吖啶橙(AO)和碘化丙啶(PI)等染料,可以只对有核的PBMC进行染色,并通过双重荧光区分活细胞和死细胞。 AO和PI都可以对核酸进行染色,但只有AO能够穿过活细胞膜。 最终活的PBMC被AO染色,并呈现荧光绿,死的PBMC同时被AO和PI染色,呈现荧光红。但红细胞没有染色,根本没有发出荧光。
2.7-AAD区分细胞膜完整性:7-氨基放线菌素D是一种核酸染料,因其无法透过完整的细胞膜,故不能染色活细胞和早期凋亡细胞。 3.操作简便快捷:该试剂盒通常提供即用型结合缓冲液和优化的工作液配方,染色步骤简单,孵育时间短(通常15-20分钟),兼容流式细胞术和荧光显微镜平台,便于快速获得结果。 5.活细胞分析能力:相较于碘化丙啶等传统染料,7-AAD对早期凋亡细胞的毒性较低,更利于进行活细胞分析。 2.染色孵育:向细胞悬液中加入适量AnnexinV-FITC和7-AAD工作液,轻轻混匀,于室温(20-25℃)避光孵育15-20分钟。 设置合适的荧光通道(FITC:FL1;7-AAD:FL3或等效通道),并使用未经染色的细胞和单染管进行荧光补偿调节。
PI (碘化丙啶) 是一种红色荧光染料,它不能进入活细胞或早期凋亡细胞,但可以进入已经死亡或晚期凋亡细胞,因为这些细胞的膜已经破损。 加入 10 μL PI Stain,轻轻混匀。5. 室温下避光孵育 10-20 min。注:孵育过程中可轻轻颠倒数次以加强染色效果。6. 流式细胞仪检测:用流式细胞仪检测荧光强度。01注意事项a. 建议设置三组对照:未染色组、PI 单染组及 Annexin V-FITC 单染组。c. 所有操作应尽量快速,避免细胞长时间暴露于非生理条件下。d. 实验步骤与注意事项一、JC-1 染色液的配制制备储存液用 DMSO 配制 5 mg/mL 的 JC-1。如用 1 mL DMSO 溶解 5 mg JC-1。 二、JC-1 染色1. 以 6 孔板为例进行细胞铺板,密度为 5×105 cells/mL。37℃,5% CO2 培养箱培养过夜。
1.2 细胞核染色分析在凋亡细胞中,质膜通透性和染色质浓缩发生变化,可以使用 DAPI、Hoechst 以及碘化丙啶 (PI) 荧光染料, 通过流式细胞仪或荧光显微镜轻松检测到。Figure 5. DAPI, Hoechst 和 PI 的荧光染色效果图[6][7]。(A) 甲基乙二醛(MG)(1.5 mM, 24 h)诱导PC12细胞凋亡,并用PI和Hoechst 33342染色。 添加新鲜培养基并轻轻悬浮细胞 制成单细胞悬浮液。1000 ×g 离心 5 分钟,然后弃去上清液。加入 1 mL 预冷的 PBS 重悬细胞沉淀,1000 ×g 离心 5 分钟弃上清,保留细胞沉淀。2. 加入 5 μL Annexin V-FITC、10 μL PI (Propidium Iodide),室温避光 孵育 10-20 min。孵育过程中可轻轻颠倒数次 ,以加强染色效果。3. 活细胞呈现为 Annexin V− /PI−阴性, 早期凋亡细胞为 Annexin V+ /PI− ,而晚期凋亡细胞为 Annexin V+ /PI+ 。
核心配置与要求:试剂盒以 PI 为荧光染料,激发波长(Ex)536nm,发射波长(Em)617nm,需搭配流式细胞仪检测,检测通道设置为 PI、PerCP、PE。 精准解析细胞周期各时期的细胞比例,是研究细胞增殖活性、药物作用机制、基因功能等领域的关键手段,而基于荧光染色与流式分析的检测方法,因高效、精准成为该领域的主流技术。 检测原理细胞周期检测试剂盒(红色荧光)利用细胞内 DNA 与荧光染料 PI(碘化丙啶)特异性结合的特性,结合流式细胞术实现细胞周期分析。 凋亡细胞检测:细胞凋亡时,细胞核浓缩、DNA 片段化,部分 DNA 片段丢失,导致 PI 染色后呈现弱染,荧光强度小于 1,在流式结果图中形成特征性的 sub-G1 峰(凋亡细胞峰)。
死细胞的红色荧光标记(PI) 碘化丙啶(PI)是一种亲水性核酸染料,无法穿透活细胞完整的细胞膜。 通过 Calcein AM 与 PI 的联合使用,可在同一体系中同时实现活细胞(绿色)与死细胞(红色)的双重染色,结合流式细胞仪(检测通道:FITC、PE/PerCP/Cy5.5)或荧光显微镜(滤光片: 传统活死细胞检测方法(如台盼蓝染色)虽操作简单,但仅能通过细胞形态初步判断,无法实现荧光级别的精准区分与量化分析;单一荧光染色法则难以同时排除死细胞干扰与细胞碎片影响。 四、产品核心优势:高效、稳定、灵活相比同类产品,Calcein AM/PI活死细胞双染试剂盒在性能与使用体验上展现出多重优势,为科研实验提供便利:检测高效,耗时短:整个检测流程仅需 30 分钟,染色后 荧光稳定,抗淬灭性强:Calcein 与 PI 的荧光信号稳定,若需长期培养,染色后避光置于 CO₂培养箱,48 小时内仍可检测;荧光显微镜拍照时,降低光强、增加曝光时间并及时关闭荧光开关,可进一步减少光漂白
细胞核用碘化丙啶 (红色) 复染。 荧光标记的鬼笔环肽极少会非特异性染色,染色和未染色区域之间的对比度非常大,可使 F-actins 高效染色。 共聚焦显微镜捕获细胞。 蓝色通道,细胞核 Hoechst 染色;红色通道,F-actins 被 Rhodamine Phalloidin 染色;以上通道的组合;白色循环和箭头,扩散的细胞周肌动蛋白纤维。 Di 系列荧光试剂可侧向扩散染色整个细胞,是便捷的细胞轮廓标记物,DiO、DiI、DiD 被激发后分别发出绿色、橙红色、红色荧光。 表 4. 关于细胞染色,小 M 今天就介绍到这里了,小伙伴们有没有 Get 到新技能呢? 参考文献 1.
吞噬细胞吞噬垂死细胞后,LAP PI3K 复合物被募集到含有凋亡细胞的LAP相关吞噬体 (LAPosome),该复合物对 LAPosome 的保持至关重要,并且激活了 LC3 的连接机制。 胞葬的动态追踪 常规的胞葬作用研究是在体外进行,例如使用原代人巨噬细胞和凋亡 Jurkat T 细胞进行免疫荧光染色后,可在显微镜下观察到胞葬作用的过程[3]。 经 Annexin V-mCherry 染色后,正常细胞基本无荧光,凋亡细胞及坏死细胞呈红色荧光。 细胞凋亡与坏死检测试剂盒采用 Hoechst 33342 和碘化丙啶(Propidium Iodide, PI)双染的方法快速检测细胞凋亡与细胞坏死。
因此一般在铁死亡的研究中,检测细胞活力是常见方法,同时也会通过染色等方法来观察细胞膜通透性,线粒体形态等。 同时碘化丙啶(PI) 和 CFDA-SE 染色结果以及用透射电镜观察到的线粒体碎裂、空泡化和嵴增大都表明 FXN 耗竭协同 Erastin 诱导铁死亡[3]。 例如,在研究氧化应激介导的视网膜色素上皮 (RPE) 变性的潜在机制时,通过用 FerroOrange 染色细胞 (亚铁离子探针),结果表明 NaIO3 和 Erastin 处理的细胞积累了过多的亚铁离子
内容概要本文聚焦 Elabscience 4',6-二脒基-2-苯基吲哚二盐酸yan(DAPI)染色液(货号为 E-CK-A163) 的 25μg/mL DAPI 染色液,从产品核心信息、技术背景、检测原理 产品介绍Elabscience 4',6 - 二脒基 - 2 - 苯基吲哚二盐酸yan(DAPI)染色液,浓度设定为 25μg/mL,货号为 E-CK-A163。 应用领域基于其优异的染色性能,该 DAPI 染色液可广泛应用于多种科研技术场景:荧光显微术:用于细胞涂片、组织切片等样本的细胞核定位与观察,清晰呈现细胞形态与核结构。 Differentiation of Yunan Black Pig Muscle Satellite Cells (MuSCs) In Vitro via Iron Homeostasis and the PI3K 众多高影响力文献的引用更是印证了其在科研领域的认可度,相信这款 DAPI 染色液将成为科研人员探索生命奥秘过程中的得力助手,为各类细胞学与分子生物学研究赋能。
H2DCFDA 工作液的配制 1、储存液的配制:用 DMSO 注:H2DCFDA 储存液建议分装后-20℃ 避光冻存,一个月。-80 半年。 2、工作液的配制:用预热好的无血清细胞培养基或缓冲液 (如 PBS) 稀释储存液,配制终浓度为 5-10 μM 的 H2DCFDA 工作液 (1×)。 用 H2DCFDA 和 细胞壁指示剂 PI 共染色柱头,ROS 位于乳头细胞的细胞质中,靠近质膜外围(图 1C)。 除了上述柱头染色, 还可用于原生质体染色,如图 4 所示,用 H2DCFDA 对原生质体进行染色以检测 ROS 的产生,并通过活细胞成像 (Live-cell imaging) 跟踪整个过程。
在进行样本处理时,可利用红细胞裂解液对样本进行红细胞裂解,避免红细胞干扰实验结果,也可使用Ficoll分离液得到目的细胞。 Fig. 2. 不同处理下淋巴细胞检测结果图(左图未裂红处理,中图经过红细胞裂解液处理,右图经过Ficoll分离液处理)2) T细胞活化与扩增。为了评估T细胞的功能与状态,在检测前通常需要对T细胞进行活化并使其增殖。 染色类试剂1) 染色缓冲液。流式染色缓冲液中含有BSA,能减少抗体或荧光染料与细胞的非特异性结合,也可在离心等步骤中减少细胞间的剪切力,起到保护细胞和降低细胞损失的作用,适合用于胞内流式染色。 (B)4) 核内因子染色。 KitE-CK-A10950 Assays/100 Assays /500 AssaysFoxp3/Transcription Factor Staining KitE-CK-A10820 Assays核染料PI
对细胞生长的抑制是通过诱导细胞死亡实现的,因为在用CHIR-124处理的含有ecDNA的肿瘤细胞中观察到了更快和更高程度的细胞凋亡,这通过末端脱氧核苷酸转移酶dUTP缺口末端标记(TUNEL;图3e)和PI-Annexin V染色(扩展数据图8f)检测得到。 染色质在4°C下以1,400g离心5分钟,然后在1 ml TE缓冲液加0.1% SDS中重悬,使用Covaris E220进行超声处理,设置如下:140 W,10%占空比,每次脉冲200个循环,每个样本 每份样品使用100 μl蛋白A磁珠,用1 ml预冷的封闭缓冲液(0.5% BSA在PBS中)洗涤三次,然后加入染色质,在抗体过夜孵育后,4°C下旋转4小时。 将 100 微升细胞悬液转移到 FACS 管中,并用 FITC Annexin V 和碘化丙啶染色。
相同样本排除死细胞前后结果对比(A组未加死活染料染色,B组加入PI染料进行染色)2. 自发荧光干扰:死细胞会导致背景自发荧光增强,其信号强度甚至可能超过某些荧光素的真实信号。 核酸染料(适用于未固定样本)该方法的原理基于活细胞膜的完整性:活细胞因膜结构保持完整,具有选择透过性,使得PI、7-AAD、DAPI这类核染料无法进入细胞内部,因此不会显现荧光;而死细胞由于膜已破损,染料可进入细胞内并与核酸结合 使用时,在完成流式抗体染色后,于上机前加入核酸染料并进行短暂孵育。 使用时,在流式抗体染色前进行死活细胞染色,清洗后细胞可继续进行固定和破膜操作,且其荧光信号不会丢失。不同样本如何选择?并非所有样本都必须要进行死活染色。根据我们的经验,为您提供以下实操建议:1. 但若不太新鲜或处理不当,仍建议染色。2. 脾脏/淋巴结等组织:样本制备难度相对容易,可根据单细胞悬液的质量决定。若镜下可见较多碎片,建议进行染色。3.
解离产率为5000cells/mg,存活率大于等于93%(以AO/PI计数为标准)。 一. 实验试剂及耗材 表1. 在离心管中加入5mL预冷的DPBS,稀释胰蛋白酶混合液,终止消化。 在离心机中使用250g 4℃ 离心5min后,除去上清液; 在离心机中加入4mL预冷的DPBS重悬细胞核组织,在冰上沉淀40s 大组织块沉降(此时释放的细胞留在上清液中)。 将终止消化后的酶及细胞混合物分别通过 70μm和40μm的细胞筛,下清液离心收集细胞。 在4°C下旋转300 g 离心5 min,除去上清液,使用DPBS(含1% BSA)重悬细胞,置于冰上备用。 ,用AO/PI染料染色计数。